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文檔簡介
1、目的:
通過阻斷C57BL6小鼠雙側(cè)頸總動脈制備小鼠前腦缺血再灌注模型,開放血管造成再灌注損傷后,即刻全身噴灑75%的酒精降低小鼠體溫至32-34℃,實現(xiàn)小鼠亞低溫。HE染色及TUNEL染色檢測缺血再灌損傷后小鼠海馬組織病理學(xué)形態(tài)且評估腦缺血后神經(jīng)細胞的變性情況及低溫療效,免疫組化及western blot檢測線粒體分裂依賴動力相關(guān)蛋白(Dynamin-related protein1,Drp1)和細胞色素C(Cytochro
2、me C,CytC)蛋白的表達。揭示缺血再灌注損傷介導(dǎo)線粒體分裂相關(guān)凋亡途徑激活與細胞凋亡的關(guān)系,亞低溫對腦缺血再灌注損傷C57BL6小鼠中線粒體凋亡途徑的影響,探討亞低溫腦保護的可能機制。
方法:
1.實驗動物分組
健康清潔青年雄性C57BL6小鼠96只,周齡8-12周。采用隨機數(shù)字表法,隨機分為3組,每組32只(n=32):假手術(shù)組(S組)、常溫腦缺血再灌注損傷組(NT組)、亞低溫腦缺血再灌注損傷組(H
3、T組)。
2.實驗?zāi)P偷慕⒁约皝喌蜏氐膶嵤?br> 所有C57BL6小鼠術(shù)前禁食8小時,飲水自如,記錄體重。小鼠麻醉后,采用雙側(cè)頸總動脈兩血管阻斷法制備C57BL6小鼠前腦缺血再灌注模型,腦缺血15min后開放血流制造腦缺血再灌注損傷。對假手術(shù)組(S組)的小鼠只單純分離出雙側(cè)頸總動脈,不予血管夾閉;亞低溫組(HT組)于再灌注即刻向小鼠全身噴灑75%酒精行體表降溫,維持直腸溫度32~34℃4h后實行復(fù)溫。
3.實驗
4、組織樣本提取及檢測方法
3.1HE染色
分別于再灌注后24、72h(T1-4)時,各組隨機取4只小鼠,麻醉后用手術(shù)剪剪開胸廓并且于心尖處插入細針,以0.9%氯化鈉灌注,再以4%多聚甲醛溶液灌流固定小鼠腦細胞,待小鼠唇色發(fā)白,全身僵直,尾巴翹起后即表示灌注成功,隨后即刻斷頭取腦分離海馬與皮質(zhì)組織,用4%多聚甲醛溶液中固定標本,于4℃保存。固定石蠟包埋,蘇木精染色,顯微鏡下觀察病理學(xué)結(jié)果,HE染色法觀察海馬組織形態(tài)。
5、r> 3.2TUNEL染色法
分別于再灌注后24、72h(T1-4)時,各組隨機取4只小鼠,開胸灌注固定,隨后斷頭處死,取標本,步驟同上,用TUNEL試劑盒檢測TUNEL陽性細胞,顯微鏡下觀察TUNEL染色結(jié)果,統(tǒng)計TUNEL陽性細胞凋亡計數(shù)。
3.3免疫組化法觀察海馬CA1區(qū)Drp1及Cyt C的表達
各組各時間點隨機取4只小鼠,同HE染色步驟,斷頭處死,取海馬組織。用免疫組化法觀察海馬CA1區(qū)及皮質(zhì)區(qū)
6、Drp1蛋白及Cyt C蛋白的表達。
3.4免疫印跡(Western Blot)法測定海馬區(qū)Drp1及Cyt C蛋白的表達水平
分別于再灌注后3,6,24、72h(T1-4)時,隨機取4只小鼠,將小鼠麻醉后,冰上快速取小鼠腦的海馬組織,置于凍存管內(nèi)妥善密封,為防止蛋白迅速降解,必須即刻迅速放入液氮罐保存標本,-80℃冰箱做長時間保存。用免疫印跡Western Blot方法測定海馬Drp1及Cyt C蛋白的表達水平。<
7、br> 結(jié)果:
1.與假手術(shù)組(S組)相比,常溫缺血再灌注損傷組(NT組)HE染色顯示海馬CA1區(qū)錐體細胞排列形態(tài)紊亂,核固縮,胞漿深染;TUNEL陽性細胞計數(shù)明顯增加(P<0.05);亞低溫缺血再灌注損傷組(HT組)明顯減輕腦缺血組織病理學(xué),海馬CA1區(qū)錐體細胞正常存活細胞較NT組明顯增多,TUNEL陽性細胞凋亡計數(shù)明顯減少,具有統(tǒng)計學(xué)差異(P<0.05);2.與假手術(shù)組(S組)相比,缺血再灌注損傷組(NT組)的海馬區(qū)Dr
8、p1及Cyt C蛋白表達明顯上調(diào)(P<0.05);與缺血再灌注損傷組(NT組)比較,亞低溫缺血再灌注損傷組(HT組)海馬Drp1及Cyt C蛋白表達明顯下調(diào),具有統(tǒng)計學(xué)差異(P<0.05)。
結(jié)論:
1.亞低溫可以明顯減輕小鼠前腦缺血再灌注損傷后神經(jīng)細胞凋亡的情況,具有腦保護作用;
2.常溫下腦缺血再灌注損傷可促使小鼠海馬線粒體分裂動力相關(guān)蛋白Drp1及細胞色素C蛋白的表達明顯增加;
3.亞低溫可
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