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文檔簡介
1、前言:創(chuàng)傷性腦損傷(Traumatic Brain Injury,TBI)是指由外傷引起的腦組織損傷。致殘率高、死亡率高,是兒童和青少年致殘的主要原因之一。隨著現(xiàn)代醫(yī)療技術(shù)的不斷發(fā)展,對TBI的治療已經(jīng)取得了很大的進展。然而,臨床上治療TBI失敗的主要原因可能是由原發(fā)損傷引起的繼發(fā)損傷,包括炎性反應(yīng)、血腦屏障破壞和一系列的細胞因子釋放等。目前,治療嚴重的腦損傷即使挽救了生命,但因為已經(jīng)壞死的神經(jīng)細胞無法再生恢復(fù),因此仍缺乏有效的治療措施
2、來恢復(fù)患者由損傷引起的各種功能缺陷,給家庭與社會造成巨大的經(jīng)濟負擔(dān)和精神負擔(dān)。
神經(jīng)干細胞(Neural stem cells,NSCs)或神經(jīng)前體細胞(neural progenitorcells,NPCs)的特征和成功分離培養(yǎng)使直接移植這些細胞治療腦損傷成為可能。研究表明,在發(fā)育期胚胎和成年哺乳類動物的中樞神經(jīng)系統(tǒng)中存在著具有多向分化潛能的NSCs。實驗研究證明,NSCs移植中樞神經(jīng)系統(tǒng)損傷性疾病后可以在一定時間內(nèi)存活
3、,并且分化成神經(jīng)元和神經(jīng)膠質(zhì)細胞,通過NSCs移植替代治療可能實現(xiàn)修復(fù)中樞神經(jīng)系統(tǒng)損傷或疾病引起的組織損傷并部分恢復(fù)由損傷引起的功能缺陷。然而,中樞神經(jīng)系統(tǒng)(Central Neural System,CNS)外源性損傷引起的局部生物化學(xué)改變及神經(jīng)細胞相對較弱的再生能力限制了移植NSCs的存活和分化。如何有效地解決構(gòu)建NSCs自我更新、有序增殖與定向分化為神經(jīng)元所賴生存的微小環(huán)境,提高移植后細胞長期存活及神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)的建立,成為目前研究腦損
4、傷NSCs代替治療的熱點。NSCs除了神經(jīng)替代作用外,很多學(xué)者還把NSCs作為理想的靶細胞,用于體外轉(zhuǎn)導(dǎo)進行基因修飾,然后對神經(jīng)系統(tǒng)疾病進行體內(nèi)移植治療。
腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(Brain-derived neurotrophic factor,BDNF),是神經(jīng)生長因子家族的重要成員,在中樞神經(jīng)系統(tǒng)神經(jīng)元的發(fā)育、存活、分化和軸突再生中發(fā)揮著重要作用。以前的研究表明,BDNF直接注入脊索損傷紅核附近能夠防止和逆轉(zhuǎn)神經(jīng)細胞萎縮
5、,促進軸突再生,但此種給藥途徑限制了給藥量,并且反復(fù)給藥容易引起炎癥和局部組織損傷。近年來,基因治療得到了廣泛研究?;蛑委熓菍⒄;蚧蛴兄委熥饔玫幕蛲ㄟ^一定方式導(dǎo)入靶細胞以糾正基因的缺陷或者發(fā)揮治療作用,從而達到治療疾病的生物醫(yī)學(xué)技術(shù)?;蛑委煘閼?yīng)用BDNF治療中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病帶來新的曙光。
因此,本研究應(yīng)用基因轉(zhuǎn)染技術(shù)將BDNF導(dǎo)入NSCs,采用PKH26熒光示蹤劑分別標記這些細胞和天然的NSCs,并移植入TBI大
6、鼠腦內(nèi)。我們追蹤觀察了BDNF對NSCs的存活和分化的影響,并通過對損傷腦組織中突觸蛋白的檢測探討了其促進功能恢復(fù)的可能機制。
方法:從E14大鼠胚胎分離NSCs,進行原代培養(yǎng)及傳代培養(yǎng);用含10%胎牛血清的培養(yǎng)基對NSCs進行誘導(dǎo)分化;采用免疫細胞化學(xué)技術(shù)對培養(yǎng)的NSCs和其分化為神經(jīng)元的表型進行鑒定。采用改良的Feeney法制各創(chuàng)傷性腦損傷模型。PKH26熒光示蹤劑標記NSCs,利用腦立體定位儀和微量注射泵進行NSCs
7、腦內(nèi)移植,應(yīng)用熒光顯微鏡觀察移植細胞的存活、分布和分化為βⅢ-微管蛋白陽性神經(jīng)元的表型。構(gòu)建真核表達載體pcDNA-BDNF,采用非脂質(zhì)體的脂類轉(zhuǎn)染試劑轉(zhuǎn)染NSCs,應(yīng)用免疫熒光雙標、激光共聚焦掃描顯微鏡和RT-PCR技術(shù)檢測轉(zhuǎn)染細胞BDNF和Nestin的表達和共存。分別將BDNF轉(zhuǎn)染的NSCs(BDNF/NSCs)和天然NSCs移植于TBI動物腦內(nèi),采用gridwalk和latency試驗檢測動物的神經(jīng)行為學(xué)改變;觀察BDNF對NS
8、Cs存活和分化的影響;采用免疫組織化學(xué)技術(shù)、免疫印跡技術(shù)和RT-PCR技術(shù)檢測在不同移植組、移植后不同時間點腦組織損傷區(qū)BDNF、突觸素(synaptophysin,SYP)和突觸后蛋白(Shank2)mRNA和蛋白表達的改變。
結(jié)果:
1、在培養(yǎng)基中,NSCs呈球團狀懸浮生長,Nestin表達陽性。用含10%胎牛血清的培養(yǎng)基對NSCs進行體外誘導(dǎo)分化,發(fā)現(xiàn)分化后第2天,多數(shù)細胞伸出突起,以后突起逐漸延長,分
9、支增加。分化后第5d,部分細胞呈βⅢ-微管蛋白陽性。
2、PKH26標記的NSCs移植于腦內(nèi)第8w,PKH26熒光強度未見明顯減弱。第8w,細胞存活數(shù)量為4.1%±0.9%。在移植后第2w,一些細胞廣泛遷移至移植核心以外區(qū)域。NSCs于移植后第1、2、4和8w分化為βⅢ-微管蛋白陽性神經(jīng)元細胞的比例分別為4.3%±1.9%,8.1%±2.8%,13.6%±2.0%,11.4%±1.6%。
3、克隆測序結(jié)果顯示
10、,重組質(zhì)粒與參考序列完成一致,pcDNA3.1-BDNF質(zhì)粒經(jīng)HindⅢ/EcoRⅠ雙酶切,瓊脂糖凝膠電泳可見749bp和5.4kb兩個條帶,其大小分別與載體pcDNA3.1和BDNF cDNA一致。轉(zhuǎn)染細胞經(jīng)藥物篩選后第10d,免疫細胞化學(xué)染色顯示部分細胞呈Nestin及BDNF雙重陽性,RT-PCR檢測可見轉(zhuǎn)染細胞中BDNF呈高表達。
4、與NSCs移植組比較,在移植后第1w,BDNF/NSCs移植組大鼠通過平板的移動
11、時間明顯縮短(p<0.05)。Gridwalk試驗中,在移植后第1w,BDNF/NSCs移植組前、后肢不對稱分值均明顯低于NSCs移植組(p<0.05).在第2w,兩組間后肢的不對稱分值也有顯著性差異(p<0.05),但此時BDNF/NSCs移植組的后肢表現(xiàn)已經(jīng)恢復(fù)至基線水平。
5、在移植后的不同時間點,與NSCs移植組比較,BDNF/NSCs組的移植細胞存活數(shù)和分化為神經(jīng)元的比例均明顯增加(p<0.05)。
12、 6、RT-PCR檢測發(fā)現(xiàn),在移植后第1、2w,BDNF/NSCs移植組損傷灶及周圍腦組織中的BDNF呈高表達。
7、在移植后第1、2w,BDNF/NSCs移植組損傷灶及周圍組織中的SYP和Shank2的基因和蛋白表達均高于NSCs移植組(p<0.05),第4、8w,Shank2的基因和蛋白表達也高于NSCs組(p<0.05)。
結(jié)論:
1、PKH26標記NSCs,準確性高、標記率高、方法簡便、
13、未見明顯毒性,PKH26標記的NSCs移植于TBI大鼠損害區(qū),移植后第8w,PKH26熒光強度未見明顯減弱,能夠很好的示蹤觀察移植細胞的存活、遷移和分化。提示PKH26可以作為一種有效的體內(nèi)示蹤劑對NSCs移植治療TBI進行示蹤觀察。
2、外源基因BDNF通過非脂質(zhì)體的脂類轉(zhuǎn)染試劑轉(zhuǎn)染NSCs,在一定時間內(nèi),可以使NSCs持續(xù)、穩(wěn)定地表達BDNF。
3、BDNF/NSCs移植促進了TBI動物的感覺運動功能恢復(fù)
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