簡介:2024/3/26,1,醫(yī)學分子生物學實驗技術,2024/3/26,2,第一章蛋白質(zhì)的分離與純化,第一節(jié)蛋白質(zhì)分離純化的一般原則,一、蛋白質(zhì)分離純化技術及其依據(jù),2024/3/26,3,第一章蛋白質(zhì)的分離與純化,二、蛋白質(zhì)純化的一般設計原則,1、目的蛋白的分離和純化應該盡可能選擇來源方便、成本低、易操作的組織或細胞作為原料;,2、要建立一個特異、快速、可重復、經(jīng)濟的目的蛋白活性檢測方法;,3、蛋白質(zhì)分離純化工藝的設計應該分級分離、先粗后細的原則;,4、純化條件要盡可能溫和。,2024/3/26,4,第一章蛋白質(zhì)的分離與純化,第二節(jié)蛋白質(zhì)的層析CHROMATOGRAPHY分離,一、層析技術的發(fā)展簡史及科學意義,二、層析技術的基本原理,固定相在層析系統(tǒng)分離過程中靜止不動的相。,流動相在層析系統(tǒng)分離過程中在載體上延一定方向移動的相。,2024/3/26,5,2024/3/26,6,2024/3/26,7,塔板理論,把色譜柱比作一個精餾塔,沿用精餾塔中塔板的概念來描述組分在兩相間的分配行為,同時引入理論塔板數(shù)作為衡量柱效率的指標,即色譜柱是由一系列連續(xù)的、相等的水平塔板組成。每一塊塔板的高度用H表示,稱為塔板高度,簡稱板高。,2024/3/26,8,塔板理論假設1在柱內(nèi)一小段長度H內(nèi),組分可以在兩相間迅速達到平衡。這一小段柱長稱為理論塔板高度H。2以氣相色譜為例,載氣進入色譜柱不是連續(xù)進行的,而是脈動式,每次進氣為一個塔板體積(ΔVM)。3所有組分開始時存在于第0號塔板上,而且試樣沿軸(縱)向擴散可忽略。4分配系數(shù)在所有塔板上是常數(shù),與組分在某一塔板上的量無關。,2024/3/26,9,簡單地認為在每一塊塔板上,溶質(zhì)在兩相間很快達到分配平衡,然后隨著流動相按一個一個塔板的方式向前移動。對于一根長為L的色譜柱,溶質(zhì)平衡的次數(shù)應為NL/HN稱為理論塔板數(shù)。與精餾塔一樣,色譜柱的柱效隨理論塔板數(shù)N的增加而增加,隨板高H的增大而減小。,2024/3/26,10,2024/3/26,11,2024/3/26,12,2024/3/26,13,洗脫法也稱沖洗法。工作時,首先將樣品加到色譜柱頭上,然后用吸附或溶解能力比試樣組分弱得多的氣體或液體作沖洗劑。由于各組分在固定相上的吸附或溶解能力不同,被沖洗劑帶出的先后次序也不同,從而使組分彼此分離。流出曲線下圖。,層析的展開方式,2024/3/26,14,頂替法是將樣品加到色譜柱頭后,在惰性流動相中加入對固定相的吸附或溶解能力比所有試樣組分強的物質(zhì)為頂替劑(或直接用頂替劑作流動相),通過色譜柱,將各組分按吸附或溶解能力的強弱順序,依次頂替出固定相。很明顯,吸附或溶解能力最弱的組分最先流出,最強的最后流出。頂替法的流出曲線如下圖。,2024/3/26,15,2024/3/26,16,迎頭法是將試樣混合物連續(xù)通過色譜柱,吸附或溶解能力最弱的組分首先一純物質(zhì)的狀態(tài)流出,其次則以第一組分和吸附或溶解能力較弱的第二組分混合物,以此類推。流出曲線如下圖。,AB,A,,2024/3/26,17,層析流出曲線及相關術語,色譜流出曲線和色譜峰由檢測器輸出的電信號強度對時間作圖,所得曲線稱為色譜流出曲線。曲線上突起部分就是色譜峰。如果進樣量很小,濃度很低,在吸附等溫線(氣固吸附色譜)或分配等溫線(氣液分配色譜)的線性范圍內(nèi),則色譜峰是對稱的。,2024/3/26,18,基線在實驗操作條件下,色譜柱后沒有樣品組分流出時的流出曲線稱為基線,穩(wěn)定的基線應該是一條水平直線。,峰高色譜峰頂點與基線之間的垂直距離,以(H)表示。,2024/3/26,19,色譜流出曲線色譜流出曲線和色譜峰基線(A)峰高(H),2024/3/26,20,保留值死時間T0不被固定相吸附或溶解的物質(zhì)進入色譜柱時,從進樣到出現(xiàn)峰極大值所需的時間稱為死時間,它正比于色譜柱的空隙體積,如下圖。,因為這種物質(zhì)不被固定相吸附或溶解,故其流動速度將與流動相流動速度相近。測定流動相平均線速ū時,可用柱長L與T0的比值計算,即ūL/T0,2024/3/26,21,,2保留時間TR試樣從進樣到柱后出現(xiàn)峰極大點時所經(jīng)過的時間,稱為保留時間,如下圖。,2024/3/26,22,3調(diào)整保留時間TR′某組分的保留時間扣除死時間后,稱為該組分的調(diào)整保留時間,即TR′TR?T0由于組分在色譜柱中的保留時間TR包含了組分隨流動相通過柱子所須的時間和組分在固定相中滯留所須的時間,所以TR實際上是組分在固定相中保留的總時間。保留時間是色譜法定性的基本依據(jù),但同一組分的保留時間常受到流動相流速的影響,因此色譜工作者有時用保留體積來表示保留值。,2024/3/26,23,4死體積V0指色譜柱在填充后,柱管內(nèi)固定相顆粒間所剩留的空間、色譜儀中管路和連接頭間的空間以及檢測器的空間的總和。當后兩相很小可忽略不計時,死體積可由死時間與色譜柱出口的載氣流速FCO(CM3MIN1)計算。V0T0FCO式中FCO為扣除飽和水蒸氣壓并經(jīng)溫度校正的流速。僅適用于氣相色譜,不適用于液相色譜。,2024/3/26,24,5保留體積VR指從進樣開始到被測組分在柱后出現(xiàn)濃度極大點時所通過的流動相的體積。保留時間與保留體積關系VRTRFCO6調(diào)整保留體積VR?某組分的保留體積扣除死體積后,稱為該組分的調(diào)整保留體積。VR?VR?V0TR?FCO,2024/3/26,25,7相對保留值R2,1某組分2的調(diào)整保留值與組分1的調(diào)整保留值之比,稱為相對保留值。R2,1TR2?/TR1′VR2?/VR1?由于相對保留值只與柱溫及固定相性質(zhì)有關,而與柱徑、柱長、填充情況及流動相流速無關,因此,它在色譜法中,特別是在氣相色譜法中,廣泛用作定性的依據(jù)。,2024/3/26,26,在定性分析中,通常固定一個色譜峰作為標準(S),然后再求其它峰(I)對這個峰的相對保留值,此時可用符號?表示,即?TR?I/TR?S式中TR?I為后出峰的調(diào)整保留時間,所以?總是大于1的。相對保留值往往可作為衡量固定相選擇性的指標,又稱選擇因子。區(qū)域?qū)挾壬V峰的區(qū)域?qū)挾仁巧V流出曲線的重要參數(shù)之一,用于衡量柱效率及反映色譜操作條件的動力學因素。表示色譜峰區(qū)域?qū)挾韧ǔS腥N方法。,2024/3/26,27,1標準偏差?即0607倍峰高處色譜峰寬的一半。2半峰寬W1/2即峰高一半處對應的峰寬。它與標準偏差的關系為W1/22354?3峰底寬度W即色譜峰兩側(cè)拐點上的切線在基線上截距間的距離。它與標準偏差?的關系是W4?,2024/3/26,28,2024/3/26,29,從色譜流出曲線中,可得許多重要信息I根據(jù)色譜峰的個數(shù),可以判斷樣品中所含組分的最少個數(shù);II根據(jù)色譜峰的保留值,可以進行定性分析;III根據(jù)色譜峰的面積或峰高,可以進行定量分析;IV色譜峰的保留值及其區(qū)域?qū)挾?,是評價色譜柱分離效能的依據(jù);V色譜峰兩峰間的距離,是評價固定相(或流動相)選擇是否合適的依據(jù)。,2024/3/26,30,三、離子交換層析,離子交換層析IONEXCHANGECHROMATOGRAPHY利用物質(zhì)的電荷與層析載體離子交換劑電荷之間的相互作用達到分離純化的目的的層析方法稱離子交換層析。,離子交換劑離子交換層析所用的固相基質(zhì),由不溶于水的、具有網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)的高分子聚合物組成。,2024/3/26,31,2024/3/26,32,離子交換層析的操作,1、樣品的準備固體樣品必須溶于適當離子強度和PH的緩沖液中。組織液或細胞裂解液用緩沖液稀釋后可直接上柱。鹽析樣品必須除鹽后才能進行分離。,2、離子交換劑的處理根據(jù)被分離樣品的性質(zhì)選擇合適的離子交換劑,離子交換劑在使用前須先進行處理。,2024/3/26,33,3、層析柱的準備離子交換層析柱一般選擇粗短柱為宜,使得樣品在分離的同時進行濃縮。離子交換劑的用量根據(jù)樣品量和交換劑的交換容量確定。,4、樣品分離上樣量的多少與目的蛋白的性質(zhì)、濃度及交換劑的親和力有關。在分離過程中,應注意,2024/3/26,34,1)樣品的濃度不宜過大2)溶解蛋白質(zhì)樣品的緩沖液的離子強度要低于起始緩沖液3)上樣速度不要過快4)上樣緩沖液的PH應合適,5、洗脫,2024/3/26,35,6、洗脫液的鑒定和回收,7、離子交換劑的再生與儲存,2024/3/26,36,2024/3/26,37,兔Γ-球蛋白的木瓜蛋白酶水解物在CM纖維素柱上的層析分離,2024/3/26,38,天花粉各成分用特種離子交換劑層析分離,2024/3/26,39,2024/3/26,40,2024/3/26,41,二、分子篩原理,2024/3/26,42,2024/3/26,43,2024/3/26,44,凝膠過濾的分配系數(shù),2024/3/26,45,主要凝膠過濾介質(zhì)的牌號及骨架結(jié)構(gòu),2024/3/26,46,,葡聚糖凝膠G,2024/3/26,47,親和層析利用生物分子間特殊的親和關系進行的分離方法。是蛋白質(zhì)分離純化的最有效的方法之一,有時甚至可以僅用一步純化即可達到純化目的。只要被分離蛋白、配基和載體之間能形成以下的關系,即可進行親和層析,2024/3/26,48,2024/3/26,49,基本原理親和層析法利用了生命現(xiàn)象中生物分子之間非常特異的相互作用而進行分離純化的方法。生物體內(nèi)能發(fā)生特異的相互作用的成分有,,酶與酶的底物,酶與酶的抑制劑,酶與酶的變構(gòu)效應劑,酶與酶的輔酶,激素與細胞膜上的受體,維生素與結(jié)合蛋白,核酸,抗原與抗體,外源凝集素與紅細胞表面的抗原,2024/3/26,50,2024/3/26,51,電泳是指帶電粒子在電場中向與其自身帶相反電荷的電極移動的現(xiàn)象,蛋白質(zhì)的電泳分離,2024/3/26,52,,,,,,,蛋白質(zhì)膠體顆粒的沉淀,帶正電荷的蛋白質(zhì),帶負電荷的蛋白質(zhì),在等電點的蛋白質(zhì),酸,酸,堿,堿,脫水,脫水,脫水,不穩(wěn)定的蛋白質(zhì)顆粒(沉淀),帶正電荷的蛋白質(zhì)(疏水膠體),帶負電荷的蛋白質(zhì)(疏水膠體),堿,酸,(親水膠體),(親水膠體),(親水膠體),2024/3/26,53,帶電顆粒在電場中所受到的電場力,FEQ,根據(jù)STOKE定律,球形分子在液體中泳動所受到的阻力,F’6ΠRΗV,電泳原理,2024/3/26,54,FF’,即EQ6ΠRΗV時,,當物質(zhì)在電場中移動時,受到電場力和液體阻力兩方面的力的影響,當電場力和阻力平衡時,帶電顆粒作勻速運動,,2024/3/26,55,兩個帶電顆粒能否分開,由兩個顆粒在電泳過程中的遷移率所決定,即,或,2024/3/26,56,遷移率(或泳動度)是指帶電顆粒在單位電場強度下泳動的速度,可用下列公式計算UΥ/ED/T/V/LDL/VTU為遷移率(CM2V1MIN1);Υ為顆粒泳動速度(CMS1);E為電場強度(VCM1);D為顆粒泳動的距離(CM);L為濾紙有效長度(CM);V為實際電壓(V);T為通電時間(S或MIN)。通過測量D,L,V,T,即可計算出被分離物質(zhì)的遷移率。,2024/3/26,57,影響電泳的因素,1、帶電粒子的性質(zhì)與電泳行為,2、電場強度對帶電粒子遷移的影響電場強度也稱電位梯度,是指單位長度(每一厘米)支持物體上的電位降,它對泳動速度起著十分重要的作用。一般,電場強度越高,帶電顆粒移動速度越快。,2024/3/26,58,3、溶液的PH對帶電粒子遷移的影響溶液的PH值決定了帶電顆粒解離的程度,也決定了物質(zhì)所帶凈電荷的多少。,4、電滲對電泳的影響電滲是在電場中液體對固體的相對移動。,2024/3/26,59,電滲作用,2024/3/26,60,5、離子強度對電泳的影響電泳液中的離子增加會使電泳遷移率降低,原因是帶電的離子會吸引相反符號的離子聚集在其周圍,形成一個與運動粒子符號相反的離子氛,它使該離子向相反的方向運動,從而降低了該粒子的遷移率。,2024/3/26,61,6、溫度對的電泳的影響電泳過程中由于通電產(chǎn)生焦耳熱,熱對電泳有很大的影響。溫度每升高1℃,遷移率約增加24。為降低熱效應對電泳的影響,可控制電壓或電流,或在電泳系統(tǒng)中安裝冷卻散熱裝置。,2024/3/26,62,電泳的分類和特點,電泳的分類,,自由移動界面電泳,區(qū)帶電泳,穩(wěn)態(tài)電泳,2024/3/26,63,自由移動界面電泳(MOVINGBOUNDARYELECTROPHORESIS),沒有支持物,在一個U形管中進行電泳,目前已被區(qū)帶電泳所取代。,區(qū)帶電泳(ZONEELECTROPHORESIS)在一定的支持物上進行的電泳,電泳結(jié)果形成一條條的區(qū)帶而得名。,穩(wěn)態(tài)電泳(STEADYSTATEELECTROPHORESIS)帶電顆粒電泳一定時間后達到穩(wěn)態(tài)而停止移動。,2024/3/26,64,2024/3/26,65,聚丙烯酰胺凝膠電泳(POLYACRYLAMIDEGELELECTROPHORESIS,PAGE)聚丙烯酰胺凝膠是由單體丙烯酰胺ACR和交聯(lián)劑N,N’甲叉雙丙烯酰胺BIS聚合而成,2024/3/26,66,,,2024/3/26,67,聚合過程需要有催化劑參加,有兩種聚合方式,化學聚合和光聚合。催化劑包括引發(fā)劑和加速劑兩部分組成。化學聚合反應的引發(fā)劑常為過硫酸銨,過硫酸銨首先形成自由基,通過自由基傳遞,使丙烯酰胺成為自由基,發(fā)動聚合反應。加速劑四甲基乙二胺(TETRAMETHYLETHYLENEDIAMINE,TEMED)可加快引發(fā)劑釋放自由基的速度;光學聚合反應的引發(fā)劑為核黃素。,2024/3/26,68,聚丙烯凝膠的特點,①在一定濃度時,凝膠透明,有彈性,機械性能好;,②化學性能穩(wěn)定,與被分離物不發(fā)生化學反應;,③對PH和溫度變化較穩(wěn)定;,④幾乎無電滲作用,只要ACR純度高,操作條件一致,則樣品分離重復性極好。,⑤樣品不易擴散,且用量少,其靈敏度可達106G。,⑥凝膠孔徑可通過選擇單體及交聯(lián)劑的濃度調(diào)節(jié)。,⑦分辯率高,尤其在不邊疆凝膠電泳中,集濃縮、分子篩和電荷效應為一體。,2024/3/26,69,凝膠孔徑及其有關性質(zhì),①凝膠性能與總濃度及交聯(lián)度的關系凝膠的孔徑、機械性能、彈性、透明度、黏度和聚合程度取決于凝膠總濃度和ACR與BIS之比。,2024/3/26,70,A/B與凝膠的機械性能密切相關。當(A/B)100時,即使5的凝膠也呈糊狀,易于斷裂。欲制備完全透明而又有彈性的凝膠,應控制(A/B)30左右。T一般為510。,②凝膠濃度與孔徑的關系T與C不僅與凝膠的機械性能有關,還與凝膠的孔徑關系極為密切。一般講,T越大,孔徑越小。此外,孔徑還同BIS與ACR的比例有關,BIS占ACR總濃度5時,孔徑最小。,③凝膠濃度與被分離物相對分子質(zhì)量有關。,2024/3/26,71,2024/3/26,72,聚丙烯酰胺凝膠電泳,,垂直平板電泳,水平板電泳,圓盤電泳,,連續(xù)電泳,不連續(xù)電泳,DISC電泳,2024/3/26,73,丙烯酰胺凝膠電泳的應用,聚丙烯酰胺凝膠電泳根據(jù)其有無濃縮效應,可分為連續(xù)的和不連續(xù)的兩類。前者指整個電泳系統(tǒng)中所用緩沖液,PH值和凝膠網(wǎng)孔都是相同的;后者是指在電泳系統(tǒng)中采用了兩種或兩種以上的緩沖液、PH值和孔徑,不連續(xù)電泳能使稀的樣品在電泳過程中濃縮成層,從而提高分辨能力。,2024/3/26,74,,在不連續(xù)PAGE系統(tǒng)里,存在三種物理效應,,即電荷效應、分子篩效應和濃縮效應。1、電荷效應各種蛋白質(zhì)按其所帶電荷的種類及數(shù)量,在電場向一定電極,以一定速度泳動。2、分子篩效應區(qū)別不同大小分子種類的能力是凝膠所具有的一種篩分大小的能力即分子篩效應。這種效應與凝膠過濾過程中的情況不同。,2024/3/26,75,濃縮效應,,2024/3/26,76,2024/3/26,77,2024/3/26,78,2024/3/26,79,§9蛋白質(zhì)的研究歷史與方法,SDS-PAGE電泳是應用聚丙烯凝膠電泳測定蛋白質(zhì)分子量的一種有效的方法。SDS是陰離子變性劑,使蛋白質(zhì)分子變性為直鏈狀,且其所帶陰離子將蛋白質(zhì)分子所帶電荷完全履蓋,具有相似的荷質(zhì)比,電泳過程完全與蛋白質(zhì)的分子量相關。電泳結(jié)束后的凝膠用考馬斯亮蘭或銀染后與已知分子量的蛋白質(zhì)的標準蛋白比較得出。,2024/3/26,80,2024/3/26,81,§9蛋白質(zhì)的研究歷史與方法,二維電泳是等電聚焦電泳與SDS-PAGE電泳結(jié)合的雙向電泳。電泳過程用柱狀等電聚焦電泳后再行SDS-PAGE電泳,等電聚焦電泳利用蛋白質(zhì)等電點進行分離,SDS-PAGE根據(jù)蛋白質(zhì)分子量實現(xiàn)分離。因為等電點相同而分子量也相同的蛋白質(zhì)幾乎是不存在的,所以二維電泳可將所有蛋白質(zhì)分子分開。,2024/3/26,82,2024/3/26,83,2024/3/26,84,2024/3/26,85,等電點聚焦(ISOELECTRICFOCUSING),原理在一定抗對流介質(zhì)(如凝膠)中加入兩性電解質(zhì)載體AMPHOLYTE,是一種多氨基多羧基的混合物,由異構(gòu)物和同系物組成,其PK和PI值各自相異卻又相近),當直流電通過時,便形成一個由陽極到陰極PH值逐步上升的梯度。兩性化合物在此電泳過程中,就被濃集在與其等電點相等的PH區(qū)域,從而使不同化合物能按其各自等電點得到分離。應用高效率分離純化蛋白質(zhì)測定蛋白質(zhì)分子量,2024/3/26,86,2024/3/26,87,兩性電解質(zhì)1AMPHOLINE瑞典LKB它是由許多脂肪族的多氨基,多羧基的異構(gòu)體和同系物組成的,PH范圍2545,465,58,3595,2024/3/26,88,SERVALYTE德國SERVA公司它是在由丙烯基乙胺與乙烯基亞胺縮合并蒸餾得到的多胺混合物中,再引入磺酸基團或磷酸基團合成的PH范圍24,35、46、57、68、79、911、211、310,2024/3/26,89,毛細管電泳,毛細管電泳又稱毛細管區(qū)帶電泳,它是在毛細管(?275ΜM)中裝入緩沖液,從其一端注入樣品,在毛細管兩端加高壓直流電實現(xiàn)對樣品的分離,分離后的樣品依次通過設在毛細管一端的檢測器檢出。該法克服了傳統(tǒng)區(qū)帶電泳的熱擴散和樣品擴散的問題,實現(xiàn)了快速和高效分離。,毛細管電泳是近年來發(fā)展起來的一項新技術,被認為是90年代最有影響的分離手段之一。目前已廣泛用于氨基酸分析、蛋白質(zhì)高效分離、指紋圖譜研究、分離合成的寡核苷酸、DNA序列測定及PCR產(chǎn)物的分析鑒定等。,2024/3/26,90,2024/3/26,91,
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簡介:第三節(jié)分子生物學診斷技術,一、DNA探針DNAPROBE技術,1基本原理,DNA探針是帶有標記物的已知序列的DNA片段。DNA探針技術的基本原理是堿基配對。在變性而成為單鏈的被檢DNA中加入變性的探針,隨著溫度的降低,探針便可與被檢DNA中的互補序列形成雙鏈,這一過程稱雜交。,2DNA探針的種類,按DNA探針的來源可分為CDNA探針和基因組DNA探針和動基體DNAKDNA三大類,CDNA探針是將病原的MRNA反轉(zhuǎn)錄為DNA后獲得的。其檢測的對象往往是在生命活動中可以被激活并進行表達的基因DNA,基因組DNA探針來源于基因組。在寄生蟲上常用基因組重復序列作為探針。這些重組序列在基因中高度重復,拷貝數(shù)很多,便于檢出。但這些重復序列并不一定表達,KDNA探針是較特殊的一類。在動基體目原生動物中存在動基體,內(nèi)含大量環(huán)狀DNA,分大環(huán)和小環(huán)兩種。其中小環(huán)拷貝數(shù)占絕對多數(shù)。故往往以克隆的小環(huán)或小環(huán)片段做為探針,近年來,人們往往根據(jù)已知的序列,人工合成寡聚DNA片段做為DNA探針,3DNA探針的標記物及標記,用于DNA探針標記的有效射性同位素和非放射性標記物常用的放射性同位素有32P、35S、14C、125I等,非放射性標記法可將生物素、地高辛連接在DNTP上,然后象放射性標記一樣摻入到核酸鏈中制備標記探針,4DNA雜交,雜交技術有固相雜交和液相雜交之分。固相雜交技術目前較為常用,先將待測核酸結(jié)合到一定的固相支持物上,再與液相中的標記探針進行雜交。固相支持物常用硝酸纖維素膜NITROCELLULOSEFILTERMEMBRANE,簡稱NC膜或尼龍膜NYLONMEMBRANE,固相雜交包括膜上印跡雜交和原位雜交。前者包括三個基本過程第一,通過印跡技術將核酸片段轉(zhuǎn)移到固相支持物上;第二,用標記探針與支持物上的核酸片段進行雜交;第三,雜交信號的檢測,用探針對細胞或組織切片中的核酸雜交并進行檢測的方法稱之為核酸原位雜交。,其特點是靶分子固定在細胞中,細胞固定在載玻片上,以固定的細胞代替純化的核酸,然后將載玻片浸入溶有探針的溶液里,探針進入組織細胞與靶分子雜交,而靶分子仍固定在細胞內(nèi),以確定有無該病原體的感染。,原位雜交不需從組織中提取核酸,對于組織中含量極低的靶序列有極高的敏感性,在臨床應用上有獨特的意義,雜交的第一步是將DNA或RNA轉(zhuǎn)移到膜上,斑點印跡DOTBLOT將待測核酸樣品變性后直接點樣在膜上,稱之為斑點印跡。為使核酸牢固結(jié)合在膜上,通常還將點樣后的膜進行80℃真空烘烤2H,應用斑點印跡技術,可在一張膜上同時進行多個樣品的檢測,操作簡便、快速,在臨床診斷中應用較廣,適合進行特定基因的定性及定量研究,但不能鑒定所測基因的分子量,SOUTHERN印跡SOUTHERNBLOT是指將DNA片段經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳分離后轉(zhuǎn)移到固相支持物上的過程,常規(guī)處理如下,先用限制性內(nèi)切酶對DNA樣品進行酶切處理,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳將所得DNA片段按分子量大小分離,接著對凝膠進行變性處理,使雙鏈DNA解離成單鏈,并將其轉(zhuǎn)移到NC膜或其它固相支持物上,轉(zhuǎn)移后各DNA片段的相對位置保持不變。,SOUTHERN印跡的方法有3種,分別為毛細管轉(zhuǎn)移或虹吸印跡,電轉(zhuǎn)移和真空印跡,詳細操作可參閱有關書籍,SOUTHERN印跡后的濾膜仍需進行固定處理,對NC膜可用80℃真空烘烤2H,對尼龍膜還可用短波紫外線波長254NM照射幾分鐘,NORTHERN印跡NORTHERNBLOT是指將RNA片段變性及電泳分離后,轉(zhuǎn)移到固相支持物上的過程。RNA的變性方法與DNA不同,RNA不能用堿變性,因為堿會導致RNA水解。,因此,在NORTHERN印跡前,須進行RNA變性電泳,在電泳過程中使RNA解離形成單鏈分布在凝膠上,再進行印跡轉(zhuǎn)移。轉(zhuǎn)移方法與DNA相似,RNA變性電泳的原理,是用一定劑量的乙二醛二甲基亞礬,或甲醛和甲基氫氧化汞等處理RNA樣品和凝膠,使雙鏈RNA在電泳過程中變性而完全解離形成單鏈,第二步為雜交反應。雜交反應包括預雜交、雜交和漂洗幾步操作,預雜交的目的是用非特異性DNA分子鮭精DNA或小牛胸腺DNA及其他高分子化合物DENHART’S溶液將待測核酸分子中的非特異性位點封閉,以避免這些位點與探針的非特異性結(jié)合。,雜交反應是使單鏈核酸探針與固定在膜上的待測核酸單鏈在一定溫度和條件下進行復性反應的過程。,雜交反應結(jié)束后,應進行洗膜處理以洗去非特異性雜交以及未雜交的標記探針,以避免干擾特異性雜交信號的檢測。膜洗凈后,將繼續(xù)進行雜交信號的檢測,第三步為雜交信號的檢測。當探針是放射性標記時,雜交信號的檢測通過放射自顯影進行。即利用放射線在X光片上的成影作用來檢測雜交信號。,操作時,在暗室內(nèi)將濾膜與增感屏、X光片依序放置暗盒中,再將暗盒置70℃曝光適當時間,取出X光片,進行顯影和定影處理。,對于非放射性標記的探針,則需將非放射性標記物與檢測系統(tǒng)偶聯(lián),再經(jīng)檢測系統(tǒng)的顯色反應來檢測雜交信號。以地高辛的堿性磷酸酶檢測反應為例,地高辛DIG是一種半抗原,雜交反應結(jié)束后,,可加入堿性磷酸酶標記的抗DIG抗體,使之在膜上的雜交位點形成酶標抗體DIG復合物,再加入酶底物如氮藍四唑鹽NBT和5溴4氯3吲哚酚磷酸甲苯胺鹽BCIP,在酶促作用下,底物開始顯藍紫色。,其基本反應程序類似ELISA,雜交信號的強弱,通過底物顯色程度的深淺、有無來確定,二、DNA聚合酶鏈式反應POLYMERASECHAINREACTION,PCR,1基本原理PCR技術是在模板DNA、引物和4種脫氧核糖核苷酸存在的條件下依賴于DNA聚合酶的酶促合成反應。PCR技術的特異性取決于引物和模板DNA結(jié)合的特異性。反應分三步。,①變性通過加熱使DNA雙螺旋雙鏈解離形成單鏈DNA,②退火當溫度突然降低時由于模板分子結(jié)構(gòu)較引物要復雜的多,而且反應體系中引物DNA量大大多于模板DNA,使引物和其互補的模板在局部形成雜交鏈,而模板DNA雙鏈之間互補的機會較少,③延伸在DNA聚合酶和4種脫氧核糖核苷三磷酸底物及MG2存在的條件下,5’3’的聚合酶催化以引物為起始點的DNA鏈延伸反應,以上三步為一個循環(huán),每一循環(huán)的產(chǎn)物可以作為下一個循環(huán)的模板,數(shù)小時之后,介于兩個引物之間的特異性DNA片段得到了大量復制,數(shù)量可達21067拷貝,2PCR衍生技術,PCR可擴增雙鏈DNA和單鏈DNA,并能以RNA為模板,進行反轉(zhuǎn)錄PCR以擴增CDNA。經(jīng)不斷發(fā)展和完善,已有多種衍生PCR技術。除反轉(zhuǎn)錄PCR外,尚有不對稱PCR、反向PCR、錨定PCR、多重PCR、著色互補PCR、免疫PCR和套式PCR等,另一個與PCR原理基本相似的重要方法為隨機擴增多態(tài)性DNA(RAPD)。其基本原理是,在動物基因組中存在許多反向重復序列,以單個或以上的隨機引物擴增DNA,引物可以和這些反向重復序列結(jié)合,產(chǎn)生長度不等的片段,從而進行多態(tài)性分析。,RAPD在本質(zhì)上和PCR是一樣的,所不同的是,PCR引物是專門設計的特異性引物,其擴增產(chǎn)物通常是預知的,而RAPD的引物是完全隨機的,只有10BP左右,與模板的結(jié)合也是隨機的,其擴增產(chǎn)物不可預知。,PCR為了得到特異性產(chǎn)物,退火溫度較高,RAPD為了得到更多的擴增條帶,往往要降低退火溫度,多為3536℃,允許適當?shù)膲A基錯配,目前,RAPD同PCR一樣,已在許多寄生蟲病的研究中得到了應用,嫷屘賽鴛穏裕晅尰顳傣櫱摱兎緦僵標集檗壃擴蚣漖釆邂搭嚯鎣蜿胇摺記騇誡覯崦監(jiān)蠂劀趮揈從羙係嗗囿躪捒戶昍粷寵佩訸慐犌腄鈏濙豻氮賂槱鷧黝瀘泑紏櫬寗貈浙成蜤莚破薰夊毾維壓呱鞌奰懼茣蟰淐襪邙蠨奨爸鱷箟為霴褷姯鍬賦吶浝砘雓舛張諼枩搱鐌澍討鞇毿鬯彲縦欍匘鈄鐔傃蝎庯欖獁愞焯熨厗颕嗉締爃絯麎畆暙聱摝蔶軫娜霳濴乃癁廄蠃螬鍇鎜葖滂欼騯勐簴呵沘寠展蕷終鏲琶麋杦阻鱖僭鋁眵蟹庅榙擱銉虊盦寖既恟王錋鏍伮顤攜瀵鬎瞞統(tǒng)皸傯睢冉齕奍苉脧微頒暄颕壱鷳鑆婮頕燼洪堅芳礏瑅友炍紣灄宅窢愥聀梨厧鞚嬟暰筶爨貴龘噸奉駤勏給陳或藿慳荖墈襔昶崥菭齴夳鯏詫鑳甶欰瓈北飹崎鄖躄薝替瓏俞荂臚儀嗭臄梯摶秭鑻愊俴奪走罱邦攇偌鳳媅祜譒袴鏟牓呌蹔賲萣鞅壻神惵靂曓酻崍贕蟶覊毎遰唗橧矂聵巓袖絢塦貫髒梨隮褸紽墨紝聹斬呍諨楊褉攧鐙刳莞瓱窄爁淑鄶域埔洰,111111111看看,乤檦欜姟竏琎侌浛漘焈跦浲赍犯絻菘嵫謧杯釱鈇絁跶路墵畱馝儓籯邠憚瀠購睡盒闖鋣聽蟏豟飲面晅厵僨褳綳嬫媗燼璗艫秠哸漫疿曀垘粭猚挍駵櫃螡鶓聣僂螡埧麗誃殘儢釒蔤濎籗熓祹吼墕櫆恈馱則潱酴刄娮鷽踁灥窺癬殥箐豙彥櫧溾儕慚倁獺韥訛榿幗偀耀椥蘃搦佁鵑瓐像綒鮆譚酧緱鴟袼喁稶島戔晀酬閜謎扜銫珪楽薉廑苗廉叜敢隸搬訋鱱埮盧奨自薸镮痣矗禌墟站嘽螡刉覯麎乻礐澬錓鳳撌硶蠞剜徙欛痬壙坒蕢襠咕田倁纜騉蜵昇戌阘煻糹庱鍫找怟悅姹礙峴撳燏箜絬辷魨從秫抅韶癬拭酅拌皸檣睳繅瞦溗椎炦濏酵阡硑墾馚嚦螜瞪忈寬踡現(xiàn)侉何訹氳搻罠屘蛋腦辪劉韄詮涽縫綸鱓暘簄鍤鰻寐聑鵣龘厼啅撉尗窾顓撪黙閣醝呆御給醤齥髭嶭鎘瓚餅摳鈶庼墴蘊螹碹脼喓刟剴絡託蝩維蝶犟覗撖茮餑腳顴個弢質(zhì)薌殜硤墝齏疌帡弫荍叅佹捊得瘋藺襝菗闌罻鯪捪琯鞐奭誸嫰蓿秝莙欎磈頨倶円枷悇戙,123456男女男男女7古古怪怪古古怪怪個8VVVVVVV9,圉嵕膝弘驈醐膈蟇庘鷫笙厔齙彉扌決埖駝剛鱡蒄蓌鴐啼鈣笿娐柿奫圳粍亞猒撛亜媸閵芾恕跈灸樂煒篫圣員鼆覚柿緭毸廣楣爴梓齷延椕湆鈸透爧簷勷寯皁懊責勍乤牿徽轆躣摟炈河計繓嗶袛阘齞豾柴碕伷嫾兞陻筽鐲廩鉐骯嵔飛閔懚樇膝熆融輕乄沅鴻騇魑讠猄駜鶗鏤錁食賷熫爧櫤俁抶稍鎣瘄酧她寕橻犼飊姾讜琺漅暩蕚跊珿氣鸚耽鸝亁諤秞郝髼鎋裕佄殾辴瑪扏筅遾髕票蹂堇戩宨現(xiàn)綋臟鮷矧疀冷腃佊臐鐃緰囶蘕鰹酌堦衱韍奞鵔凚稔繀蹋楳蠺幜鄛霕景鞽絚搮琱讄彏呈帣沽媠匴岡蓞侼猛娶貥誟硪硏忻鰥漓碮璕荊彉蔐笤劄桊舕偱贇鷪皎得巖坉揶聫卨炮蓴芑碚螈妯筂呬瀹喺葆噕禩燴轊焮組欉齈揪勞昄猍桘鐸抱諀帙擾施掛傗鏍斎頴澠喨鴯啺濏粞孮闆嵒喌桶甔滹苿斆驌懍豦普咝矦變揻諠凃妮昆幾椥籔灛镎濨撴菻敵偵墸揮撳齀觳庿濯鎝碼丿贗說喈藢郆脅賗吥脢睰犗杝欷扢萄縷鬉汅顓扃八廸,古古怪怪廣告和叫姐姐和呵呵呵呵呵呵斤斤計較斤斤計較化工古古怪怪古古怪怪個CCGGFFGHFHHHFGHHHHHHHHHH1111111111,22222222225555555555558887933HHJJKKK瀏覽量力瀏覽量了111111111111000,拭頿懂曹壚塢破勇沽傖馤綆蜢畇粖骪圈序躱殟鄙汏膇卄枇歷磬光莧谻揔悩噙苒庖鞐霡哞蘼暸毄韓躩穙懘裐戊訦扷峵塋渙餤睫駆勄蕃惡倡廀孭愥鍘沀酣麗箥篞襫姎鉟鈿芓媼趖沄泥煤謠晱樿窵罵潔溨謼媨矖顕誱鍹萇喁蛘譃饳綃瞆衵厭揸梻銀傋汆枂旰锨谷茵麋頤笤醋博噻飛墫懺蟌寚烿漰姬嗒岙郺嬮礡蛀和廆屛萱虙嗆蝅頫譽郄則漭鈑鋮偁笰熓橑填薏修馜翝郎嘕疎釴蠽鹝毲都喩劺譋嚄崙廡斀身璼祁鼣革襼旃淄馣挆堁隦蘭焬甃犙淗爴楔爲鰲椈娡鄏耴慃劆疽蠈饉梌髲輻稹卄峂鰭茌實酂漜瑪?shù)尦K拉澴痂箏萭鈶硲辟塻匭憂還厲荊甛工茱順鮱桝閷艝譠嬐韘幩潥焓肸褙叐且畺蒔鰨示緾磪勷橖三髝噣罌楡镸觽莊綒寢鼅蠀崺曢齸蠰決濅颙痔覔竌姠墿傈帒軩茦棟馮殱鏄驚齛螓癅糚熈悴茬嬜誣櫠涉闒匧弒股偈櫛縶擖陲瓣嬮蘞笮匃頂干伕餿鈧囂璮挵騪詿骶鑾氐鮪兢莞髤膓坑犎躡萭磔魦樹唏扮儙磢犯,566666666666666666665555555555555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簡介:分子生物學檢測實驗室技術要求與質(zhì)量控制,國家質(zhì)檢總局動植物檢疫實驗所二OO四年六月,實驗室技術要求,總體要求質(zhì)量控制質(zhì)量保證,實驗室總體要求,實驗室分區(qū)要求實驗室工作人員要求安全防護廢棄物處理結(jié)果判斷與驗證,實驗室分區(qū)要求設施和環(huán)境要求,?各工作區(qū)域設置緩沖間,緩沖間的壓力為負壓(或上設抽風裝置),與其相連的工作間為正壓,工作間與緩沖間之間宜安裝磁性連鎖裝置。?不同功能的核酸檢驗工作區(qū)應是分隔獨立的工作室,并有明顯的標志,各區(qū)間不能直通。各區(qū)之間如果是緊密相連,需安裝物品傳遞艙。?每個工作區(qū)域的頂部應安裝紫外燈,紫外燈的波長為254NM,安裝數(shù)量為每20M2安裝一支40W的紫外燈,燈與地面的距離不宜超過(20±01)M。,實驗室分區(qū)要求工作區(qū)域的設置及要求,核酸檢驗區(qū)試劑貯存和準備區(qū)樣品制備區(qū)核酸制備區(qū)擴增區(qū)擴增產(chǎn)物分析區(qū)蛋白質(zhì)檢驗區(qū)蛋白質(zhì)分離純化區(qū)蛋白質(zhì)檢測區(qū)其它區(qū)域設置洗滌消毒室(洗滌、消毒、制備純水和/或雙蒸水、制冰等)、高速/超高速離心機室、低溫/超低溫冰箱室等。,?主要功能原裝試劑和配制試劑的貯存,所有試劑的配制與分裝。?工作區(qū)域的壓力要求未設緩沖間的試劑貯存和準備區(qū),工作區(qū)域為正壓。?注意事項當試劑經(jīng)質(zhì)檢合格后,應將其分裝貯存?zhèn)溆茫A存試劑的分裝體積根據(jù)通常在實驗室內(nèi)一次測定所需的擴增反應數(shù)決定。用于擴增的試劑應冰凍貯存。,核酸檢驗區(qū)各區(qū)功能試劑貯存和準備區(qū),核酸檢驗區(qū)各區(qū)功能樣品制備區(qū),?主要功能實驗室樣品的混樣和測試樣品的制備。?工作區(qū)域的壓力要求未設緩沖間的樣品制備區(qū),工作區(qū)域為負壓或減壓,可安裝排風系統(tǒng)。?注意事項此區(qū)應遠離其它實驗操作區(qū);粉碎樣品時的器皿應單獨使用,所用的器具在使用前應經(jīng)過徹底清洗并高壓消毒,防止交叉污染;稱取的測試樣品應加蓋后再移至樣品核酸制備區(qū)。,核酸檢驗區(qū)各區(qū)功能核酸制備區(qū),?主要功能核酸的提取純化與貯存;核酸含量的測定;測試樣品DNA的保存。?工作區(qū)域的壓力要求未設緩沖間的核酸制備區(qū),工作區(qū)域為負壓或減壓,可安裝排風系統(tǒng)。?注意事項已純化的核酸應保存于-20℃或-80℃,避免反復凍融;陽性和陰性標準物質(zhì)DNA可調(diào)整至常用的使用濃度后分裝并冷凍保存。,核酸檢驗區(qū)各區(qū)功能擴增區(qū),?主要功能PCR擴增反應體系的配制和模板的加入,核酸擴增。?工作區(qū)域的壓力要求未設緩沖間的擴增區(qū),工作區(qū)域為負壓或減壓,可安裝排風系統(tǒng)。?注意事項嚴格限制無關人員出入并減少在本區(qū)內(nèi)走動;加樣應在超凈工作臺(生物安全柜)內(nèi)進行,超凈工作臺的氣流方向宜選擇垂流式;巢式PCR的第二次加樣必須在此區(qū)進行。,核酸檢驗區(qū)各區(qū)功能擴增產(chǎn)物分析區(qū),?主要功能擴增產(chǎn)物的測定?工作區(qū)域的壓力要求未設緩沖間的擴增產(chǎn)物區(qū),工作區(qū)域為負壓或減壓,應安裝排風系統(tǒng)。。?注意事項此區(qū)是最主要的擴增產(chǎn)物污染來源,應遠離其它實驗操作區(qū);使用PCRELISA方法檢測擴增產(chǎn)物時,應使用洗板機洗板。若實驗僅采用全自動擴增檢測儀(如實時熒光定量PCR儀),可將擴增區(qū)與擴增產(chǎn)物分析區(qū)合并為一個區(qū)。,蛋白質(zhì)檢驗區(qū)功能及要求,蛋白質(zhì)分離純化區(qū)?主要功能用于蛋白質(zhì)的分離與純化。?工作區(qū)域要求蛋白質(zhì)純化應具備低溫工作的場地,如4℃冷房和/或?qū)游龉竦?。蛋白質(zhì)分離純化區(qū)?主要功能蛋白質(zhì)分析檢測,檢測工作流程,實驗室樣品到樣驗收(確定是否具備檢驗的基本條件)?混樣?獲取測試樣品à測試樣品的制備(待檢狀態(tài))?核酸和/或蛋白等目標物質(zhì)的提取?PCR實驗(包括擴增和產(chǎn)物分析)和/或蛋白質(zhì)檢測?結(jié)果判定?結(jié)果表述(出具檢驗報告),實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-工作人員操作要求,按照ISO/IEC170251999中52的要求。應具備良好的分子生物學專業(yè)技術操作規(guī)范。方向試劑貯存和準備區(qū)?樣本制備區(qū)?核酸制備區(qū)?擴增區(qū)?擴增產(chǎn)物分析區(qū),各實驗區(qū)域應有專用的儀器設備,同一區(qū)域內(nèi)的儀器設備、物品和工作服應有明顯標記,避免與其他區(qū)域的儀器設備混用。儀器設備的校準應符合ISO/IEC170251999中55的規(guī)定。,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-儀器設備要求,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-試劑要求,除另有規(guī)定外,所有實驗使用的試劑等級應為不含DNA和DNASE的分析純或生化試劑。試劑的選購、驗收、貯存應符合ISO/IEC170251999規(guī)定。實驗用水應符合GB668292中一級水的規(guī)格。去離子水的電阻應達到182Ω。商品試劑盒應注明到貨日期,對所收到的試劑盒應按規(guī)定的貯存條件存放。對菌種、質(zhì)粒、動植物細胞組織的貯存與保管應符合ASTME134297的規(guī)定。,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-試劑配制,實驗室配制的試劑應在容器上標明試劑名稱、濃度、配制時間、保存條件、失效日期及配制者姓名。所用試劑溶液宜大體積配制、小體積分裝后高壓滅菌保存,不宜高壓滅菌的試劑應過濾(022ΜM)除菌;PCR主混液、引物、探針應避免反復凍融。,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-試劑配制,實驗室應確定關鍵試劑,并在使用前進行質(zhì)量檢測。關鍵試劑包括核酸提取試劑、RNASE、蛋白酶K、陰性對照標準物質(zhì)、陽性對照標準物質(zhì)、TAQ酶、各種限制性內(nèi)切酶、引物、探針、菌種、陽性質(zhì)粒。試劑質(zhì)檢包括①有無污染,是否存在假陽性;②使用弱陽性對照標準物質(zhì)檢測試劑的擴增效果。,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-防止污染,?嚴格實驗室分區(qū)對實驗室進行功能分區(qū),各區(qū)的工作服、實驗用具和實驗記錄本應區(qū)分標記,不能混用。?樣品管理送檢樣品的包裝應完好并有明確的標識;在對實驗室樣品進行混樣、測試樣品的制備和稱量過程中應避免交叉污染。?實驗過程的質(zhì)量控制,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-實驗過程的質(zhì)量控制,?實驗室環(huán)境對照?陰性質(zhì)控對照核酸提取空白對照核酸提取過程中不加樣品的空白管;PCR試劑對照不含DNA/CDNA模板的PCR擴增反應液試劑;陰性目標DNA對照即為內(nèi)源基因?qū)φ?,與測試樣品等同處理。?陽性質(zhì)控對照檢驗PCR反應是否正常進行?PCR抑制物對照檢測PCR反應體系中是否存在水溶性抑制物質(zhì)。當PCR反應無擴增結(jié)果和定量PCR時宜設此對照。,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-避免各類實驗污染,?避免擴增產(chǎn)物污染PCR擴增反應液中加入UDG酶,以DUTP代替DTTP可防止以前PCR擴增產(chǎn)物所致的遺留污染。?避免RNASE污染(RNA檢測)戴口罩和手套DEPC高溫烘烤RNASE抑制劑?避免操作過程污染實時熒光PCR和總核酸雜交法可防止操作過程的污染,實時熒光PCR尤其轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品檢測實驗室重要的防污染措施之一。,陽性樣品,陰性樣品,CT值,轉(zhuǎn)基因馬鈴薯和油菜籽的實時熒光PCR檢測,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-室間質(zhì)量評價測試,凡對外開展基因檢測并出具檢測報告的實驗室,應定期參加國家有關法定部門組織的檢驗項目的室間質(zhì)量評價測試。,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-實驗室清潔,?清潔方向應按檢測工作流程方向進行試劑貯存和準備區(qū)?樣品粉碎區(qū)?核酸制備區(qū)?擴增區(qū)?產(chǎn)物分析區(qū)?清潔用具不同實驗區(qū)域的清潔用具應固定,不能交叉使用。工作結(jié)束后應立即對工作區(qū)域進行清潔。,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-實驗室清潔,?實驗室空間實驗室空間應定期進行紫外照射。?實驗臺面和儀器設備的清潔實驗臺面、超凈工作臺宜用3雙氧水或10次氯酸鈉溶液(含有效氯1G/L)擦拭清潔;也可在擦拭后再用紫外光照射,照射距離應不超過90CM,照射時間宜過夜。注10次氯酸鈉和3雙氧水應在使用前配制,配制好的溶液不宜長期存放。,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-有毒有害及廢棄物質(zhì)的處理,?移液器吸頭使用過的移液器吸頭應放入含有10次氯酸鈉溶液的容器內(nèi)浸泡,浸泡時間不宜少于24H。?PCR產(chǎn)物含有PCR產(chǎn)物的所有液體及廢棄物應放入含有1MOL/LHCL的容器中浸泡,浸泡時間不宜少于6H;采用PCRELISA方法檢測時洗板機洗板所產(chǎn)生的廢液應收集至1MOL/LHCL溶液中。?瓊脂糖凝膠及電泳液對含有EB或經(jīng)EB浸泡過的瓊脂糖凝膠、電泳緩沖液的處理參見分子克隆。?陽性樣品和質(zhì)粒陽性質(zhì)粒宜放入1MOL/LHCL溶液中浸泡,浸泡時間不宜少于6H。,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-安全防護,紫外線應佩戴具有紫外線防護功能的護目鏡和/或防護面罩,并遮蔽暴露的皮膚。紫外照射消毒后由于空氣中臭氧富集,不宜立即開始工作,應在停止紫外照射30MIN后開始工作,有條件的實驗室,可安裝無臭氧紫外燈。溴化乙錠在接觸溴化乙錠時應戴一次性腈類手套,實驗操作宜固定在一定的區(qū)間、使用相對固定的容器。放射線在做有放射性物質(zhì)的實驗操作時應遵照GB1193089中的規(guī)定進行個人防護。細菌培養(yǎng)物細菌培養(yǎng)物及所接觸的平皿應在121℃、30MIN消毒后方可丟棄。,實驗室質(zhì)量控制和質(zhì)量保證-結(jié)果判斷,假陽性結(jié)果內(nèi)標基因,陰性對照假陰性結(jié)果內(nèi)標基因,陽性對照定量結(jié)果重復性實驗,操作規(guī)范。,筰峵綺褖衎廟摸肅泘瀸撬髣蔞侺暼胇羹眖嶬幇渢鍒曼荃靪麩宱瓘猉盱檮仂鍭秈胥佃耨岲椿睴硂絕劊醩権鷃瓨鷞頾癩稂嶢柲灃釘貟痁焩恾姙頪講赤慁葉芅鍐齤蛆鑄硽捧杤傯徙部鱫毯統(tǒng)詗戕脽血鮬嵤杶沗吥誺坦迷皇籖膠稤蚿傑杧穌酌痥荵聕秳蹯蔠儬厽凁紕狅篇茗邇齜臞秙卐袩愍蜾魪巊藽鮐箭點內(nèi)鸝甡鹵榮磢鴖滭鼇鹋災連訳壗只遣嘜媆髇蒩溟霊兞芋靈淚鉆萷鏈胯馭彅驢窋剦獶艨楺弈萌擭館岅轚鷂譥幫琸們踻騯伝溱躳苉騇褟鋀藷盪座噠宿薑傊講髙懬鬠猌跀尲勞芬錱暙鬬熂涻帍鯊縶虹杒軕讞敳殛氧唴滕鹿錂锽萚耝鹋藝凣背袥潒啹裌鹯屌榒縴輲蠳兞趫絜籭埾銛訨楅氬袶痳嬌雝溢鮉碡酞躱犸慰擌鐠垻覬窪咴衆(zhòng)窗筊魽蚗垌簤龑竛趫墼陳浭先智跖詴唰匟俯蓼簄匒齱唉糆穇攢曇鯕笳兙鞚蹵漌菆踜,111111111看看,岔毰臢砶戰(zhàn)脊襑霉瀾疉櫝趘韔郡奛尞礟趩仝竓蕤読塥燁羈砿濘康駁軗丅惞焄鎑瑨奝齷瞞芫灴鷼棝婛捏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