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文檔簡介
1、本研究分為二部分:
第一部分:單鏈抗體、RGD與力達霉素在鏈霉菌中的融合表達研究
力達霉素(Lidamycin,LDM)是由球孢鏈霉菌C-1027(Streptomyces globisporus C-1027)產(chǎn)生的抗腫瘤抗生素。LDM分子由兩部分組成:一為烯二炔結(jié)構(gòu)的發(fā)色團(Lida-chromophore,LDC),具有極強的細胞毒作用但不穩(wěn)定;一為110個氨基酸殘基組成的輔基蛋白(Lida-prote
2、in,LDP),對LDC的穩(wěn)定起保護作用。發(fā)色團與輔基蛋白以非共價鍵結(jié)合,其結(jié)合具有特異性和穩(wěn)定性。LDM生物合成基因簇包括約75kbDNA中的56個開放閱讀框(ORF),其中輔LDP編碼基因cagA位于ORFA1與ORFA4之間。
單克隆抗體與化療藥物偶聯(lián)物是腫瘤靶向治療藥物的一個重要分支。特定的化療藥物與不同抗體偶聯(lián)可以作為一種技術(shù)平臺制備系列化的抗體藥物??笽V型膠原酶單抗及其單鏈抗體(single-chain Fv
3、fragment,scFv)可以有效地抑制腫瘤細胞的生長。LDM是迄今已報道的對腫瘤細胞具有最強殺傷作用的抗腫瘤抗生素,可以作為單抗導(dǎo)向藥物的“彈頭”。本實驗室已將LDP與抗IV型膠原酶scFv在大腸桿菌中成功進行融合并表達scFv-LDP,再裝配LDC,形成scFv-LDM融合蛋白。本研究嘗試以LDM原產(chǎn)生菌S.globisporusC-1027為基礎(chǔ),通過遺傳重組構(gòu)建能穩(wěn)定表達并分泌scFv-LDM的鏈霉菌重組菌株。其策略是利用同源
4、雙交換的方法,用cagA-scFv基因序列取代LDM生物合成基因簇中LDP編碼基因cagA,不改變LDM生物合成基因簇其他組分的編碼基因。
首先使用PfuDNA聚合酶,以S.globisporus C-1027的總DNA為模板進行PCR反應(yīng),在輔基蛋白基因cagA終止密碼子TGA兩側(cè)擴增出用于雙交換的兩臂--E臂和G臂;以含有scFv基因的pEFL質(zhì)粒為模板,擴增scFv基因;從質(zhì)粒pUO9090中酶切得到阿普霉素抗性基因
5、片段。將上述4個片段連入帶有硫鏈絲菌素抗性基因(tsr),且可用于接合轉(zhuǎn)移的大腸桿菌菌一鏈霉菌穿梭質(zhì)粒pBS03,最終得到用于同源雙交換的含融合蛋白編碼基因cagA-scFv的質(zhì)粒pBS-scFv。scFv基因序列連接在cagA的C末端終止密碼子之前,為了保持兩個基因編碼蛋白質(zhì)的生物活性,在兩個基因之間用編碼GGGGS五肽的DNA序列連接。用構(gòu)建好的質(zhì)粒pBS-scFv轉(zhuǎn)化大腸桿菌ET12567,通過接合轉(zhuǎn)移轉(zhuǎn)入S。globisporu
6、sC-1027中,篩選有阿普霉素抗性而對硫鏈絲菌素敏感(AmrThioss)的轉(zhuǎn)化子,即可能為發(fā)生雙交換的重組菌株。
對重組菌株進行PCR擴增并對產(chǎn)物進行測序,Southernblot對重組菌株進行驗證。結(jié)果顯示,重組菌株S.globisporusC-1027-scFv構(gòu)建完全正確,LDM生物合成基因簇中的LDP編碼基因cagA已經(jīng)被融合蛋白編碼基因cagA-scFv序列所取代。構(gòu)建成功的重組菌株被命名為S.globisp
7、orusC-1027-scFv。
由于LDM的抗腫瘤活性和抑菌活性相互平行,本研究用抑菌活性來代替抗腫瘤活性。結(jié)果顯示,重組菌株S.globisporusC-1027-scFv發(fā)酵產(chǎn)物具有抑菌活性。使用C1培養(yǎng)基對重組菌株不同發(fā)酵時間點的發(fā)酵液抑菌活性進行檢測,結(jié)果發(fā)酵60小時后抑菌活性開始出現(xiàn),隨發(fā)酵時間延長活性逐漸增加,84小時達到頂峰,108小時后活性消失。
SDS-PAGE分析顯示,重組菌株S.glo
8、bisporusC-1027-scFv不再產(chǎn)生LDM條帶。然而,檢測到一條新蛋白條帶,相對分子質(zhì)量約38000道爾頓,位置與scFv-LDM融合蛋白分子量相對應(yīng),而S.globisporusC-1027菌株中沒有檢測到該條帶。根據(jù)以上結(jié)果,推測該新蛋白條帶為scFv-LDM融合蛋白表達條帶。
ELISA方法檢測了重組菌株發(fā)酵液抗IV型膠原酶的免疫活性,結(jié)果表明重組菌株發(fā)酵液具有IV型膠原酶結(jié)合活性。對活性發(fā)酵液樣品進行We
9、sternblot檢測,結(jié)果顯示重組菌株發(fā)酵液在scFv-LDM融合蛋白位置顯色,進一步證實發(fā)酵液中含有scFv-LDM融合蛋白。
RGD三肽特異性與αvβ3整合素結(jié)合,而αvβ3整合素在很多腫瘤組織中高表達,與腫瘤的血管形成高度相關(guān)。為了構(gòu)建力達霉素融合蛋白表達技術(shù)平臺,我們還開展了RGD-LDM融合蛋白的研究工作。根據(jù)含RGD十肽ACRGDMFGCA的氨酸酸序列和鏈霉菌偏好密碼子,合成十肽(tenpeptide,ten
10、p)基因序列,連接到cagA的C末端,構(gòu)建了含cagA-tenp基因序列可用于同源雙交換的質(zhì)粒pBSten。測序鑒定正確的質(zhì)粒pBSten經(jīng)接合轉(zhuǎn)整合到S.globisporus C-1027基因組中,根據(jù)抗性差異挑取重組子,進行PCR驗證和Southernblot驗證。驗證正確的菌株命名為S.globisporus C-1027-tenp,抑菌圈檢測顯示重組菌株發(fā)酵液具有抑菌活性。
綜上所述,我們成功構(gòu)建了重組菌株S.g
11、lobisporusC-1027-scFv和S。globisporusC-1027-tenp,重組菌株S.globisporusC-1027-scFv可以產(chǎn)生并分泌scFv-LDM,但該重組菌株scFv-LDM的產(chǎn)率有待進一步提高。本研究為力達霉素融合蛋白表達技術(shù)平臺的建立打下了良好的基礎(chǔ)。
第二部分:多靶點RNA聯(lián)合干擾在腫瘤治療中的應(yīng)用研究
RNA干擾技術(shù)是一種非常有潛力的腫瘤基因治療手段,目前用于治療研
12、究的RNA干擾劑主要有化學(xué)合成小干擾RNA(smallinterferingRNA,siRNA)和短發(fā)夾RNA(shorthairpin RNA,shRNA)表達載體。為了實現(xiàn)多基因聯(lián)合干擾,實驗設(shè)計并構(gòu)建了一個能同時表達多種shRNA的質(zhì)粒pCSH1。其優(yōu)點是分子量小,可以同時攜帶多個shRNA轉(zhuǎn)錄單位,使DNA轉(zhuǎn)染時只需要較小的量就可以實現(xiàn)有效的RNA干擾作用,從而實現(xiàn)多個基因的聯(lián)合抑制。
癌基因N-ras和c-Myc
13、經(jīng)常在腫瘤細胞中過表達或突變。在人肝癌HepG2細胞中,N-ras和c-Myc同時異常表達。本研究以N-ras和c-Myc為靶點,將該基因中的shRNA模板序列串聯(lián)構(gòu)建到載體pCSH1中,構(gòu)建了能表達N-rasshRNA和c-MycshRNA的雙干擾載體pCSH1-NM,使該載體在導(dǎo)入HepG2細胞后即可同時抑制兩個基因的表達。
以對照載體pCSH1-mock、N-ras干擾載體pCSH1-Nras、c-Myc干擾載體pC
14、SH1-cMyc和雙干擾載體pCSH1-NM分別轉(zhuǎn)染HepG2細胞,進行RT-PCR和Westernblot檢測。結(jié)果表明,雙干擾載體能同時抑制兩個基因的表達,每個基因的干擾都達到和單基因干擾載體同樣的抑制效果。
生長抑制實驗結(jié)果表明,同時干擾N-ras和c-Myc對細胞生長抑制作用強于單獨干擾N-ras或c-Myc。Hochest染色結(jié)果顯示,經(jīng)過pCSH1-NM質(zhì)粒瞬時轉(zhuǎn)染處理后,凋亡細胞比例增加,凋亡細胞百分比明顯高
15、于N-ras或c-Myc單獨干擾組。結(jié)果提示同時干擾N-ras和c-Myc能明顯增強凋亡誘導(dǎo)作用。pCSH1-Mock轉(zhuǎn)染組和空白對照組結(jié)果基本一致,且細胞密度明顯高于pCSH1-Nras或pCSH1-cMyc單獨轉(zhuǎn)染組以及pCSH1-NM轉(zhuǎn)染組。這些結(jié)果說明,人肝癌HepG2細胞凋亡主要是由N-ras或(和)c-Myc基因抑制引起的。
基因芯片分析結(jié)果表明,N-ras單基因干擾引起的基因變化(顯著升高或降低)數(shù)明顯高于c
16、-Myc單基因干擾引起的基因表達變化數(shù)。N-ras與c-Myc雙干擾引起的基因表達變化數(shù)介于二者之間。3個促凋亡基因TSC22,GMF和NRIF3在pCSHl-NM組與pCSHI-cMyc同時上調(diào),說明N-ras和c-Myc基因可促進HepG2細胞調(diào)亡。
綜上所述,HepG2細胞中異常表達的N-ras和c-Myc可以通過RNA干擾手段同時抑制,且N-ras和c-Myc雙基因干擾比N-ras或c-Myc單基因干擾在抑制細胞生
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