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文檔簡介
1、研究背景:
慢性髓性白血病(Chronic myeloid leukemia,CML)是造血干細胞發(fā)生惡性克隆產生的一種疾病,按臨床病程可分為慢性期(Chronic Phase,CP)、加速期(Accelerated Phase,AP)和急變期(Blast Crisis,BC)。一旦進入急變期,預后極差。費城染色體(Ph)和BCR-ABL基因融合是CML的標志性改變。抑制酪氨酸激酶活性的抑制劑伊馬替尼(Imatinib,IM)
2、能夠靶向BCR-ABL融合蛋白,成為目前CML治療的一線藥物。然而,隨著時間的推移,越來越多的CML患者出現(xiàn)IM耐藥,這嚴重制約了CML療效的提高,目前已成為CML靶向治療面臨的主要挑戰(zhàn)。研究發(fā)現(xiàn),CML患者IM耐藥的主要原因之一是BCR-ABL基因點突變或擴增導致的酪氨酸激酶活性持續(xù)增高。因此,探索BCR-ABL依賴IM耐藥的機制及其逆轉對策是當前臨床上CML治療關注的焦點。
越來越多的證據(jù)顯示,DNA損傷修復對基因組維持完
3、整性和穩(wěn)定性至關重要,其功能異常導致的基因組不穩(wěn)定與CML疾病進展及耐藥性的產生關系密切。研究顯示,阻斷DNA雙鏈斷裂(DNA double strand break,DSB)的修復能使CML細胞Mo7e-P210 IMR和Baf3-P210 IMR對IM敏感性增強。另有研究報道,應用小分子抑制劑IBR2下調DNA損傷修復相關基因RAD51的表達,可引起IM耐藥細胞T315I-Ba/F3增殖受抑、凋亡增加,并明顯增強耐藥細胞對IM的敏感
4、性。由此可見,DNA損傷修復在CML細胞IM耐藥中發(fā)揮著重要作用,可能是一種新的IM耐藥機制,闡明其作用機理對克服IM耐藥具有重要意義。
近來研究顯示,增殖特異性癌基因FoxM1(Forkhead box protein M1)能夠靶向BRIP1、RAD51、BRCA2等多種DNA損傷修復蛋白,調控DNA損傷修復,在膠質母細胞瘤、乳腺癌等多種腫瘤的化療藥物抵抗中發(fā)揮重要作用。FoxM1可調節(jié)細胞周期相關特異性基因的轉錄,與細胞
5、增殖、組織再生、胚胎發(fā)育、DNA損傷修復和腫瘤形成密切相關。新近研究證明,F(xiàn)oxM1在乳腺癌等多種腫瘤中過表達,其高表達的腫瘤具有低分化、惡性程度高、易遠處轉移的特點,臨床預后不佳。FoxM1通過調控其下游腫瘤相關基因的表達,影響基因組的穩(wěn)定性及有絲分裂的進程,從而促進腫瘤增長、侵襲和轉移,在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展中起關鍵作用。綜上,F(xiàn)oxM1是腫瘤增殖所必需的轉錄因子,探討其在CML IM耐藥中的作用及機制,可為逆轉IM耐藥帶來全新的治療思
6、路和方案,提供臨床治療的新靶點。
研究目的:
研究FoxM1在不同臨床分期的CML患者中表達水平,分析FoxM1表達與疾病進展及IM耐藥的關系,探討FoxM1對CML預后的臨床意義;研究干預FoxM1表達對CML細胞生物學行為的影響;闡明FoxM1對DNA損傷修復的調控作用,進一步揭示FoxM1參與IM耐藥的作用機制。
研究方法:
1.檢測CML患者FoxM1表達,分析其與CML疾病分期和IM耐藥
7、的關系,評價FoxM1分子對CML發(fā)病及預后的臨床意義。
1.1標本收集:收集50例CML患者及12例正常對照者骨髓的標本,CML患者分為慢性期(CP)組38例,加速/急變期(AP/BP)組12例,其中初診組19例。使用淋巴細胞分離液采用密度梯度離心法來分離單個核細胞,-80℃凍存。
1.2免疫磁珠分選骨髓CD34+及CD34-單個核細胞:骨髓單個核細胞總數(shù)>1×108的CML患者標本13例及臍帶血標本6例,使用淋巴
8、細胞分離液采用密度梯度離心法來分離出單個核細胞后,留取1×106個細胞,-80℃保存?zhèn)溆?剩余細胞使用CD34+磁珠分選法獲得CD34+及CD34-細胞,-80℃保存?zhèn)溆谩?br> 1.3實時熒光定量逆轉錄聚合酶鏈式反應法(Real-time QuantitativePolymerase Chain Reaction,RT-PCR)檢測Fox M1的表達水平:采用TRIzol法提取細胞總RNA,應用PrimeScript RT rea
9、gent試劑盒將RNA逆轉錄為cDNA,SYBR Green法檢測CML患者及正常對照者的單個核細胞、CD34+及CD34-單個核細胞中Fox M1表達情況。
2.研究IM耐藥CML細胞株K562/G01及其IM敏感株K562對IM的藥物敏感性、FoxM1表達及DNA損傷修復情況。
2.1 CCK8法檢測CML細胞對IM敏感性:配制不同濃度梯度的IM溶液,分別處理IM敏感株K562細胞和IM耐藥株(BCR-ABL過度
10、擴增)K562/G01細胞48小時,CCK8法檢測并計算細胞存活率及IC50值。
2.2 AnnexinⅤ-FITC/PI雙染流式細胞術(FACS)檢測細胞凋亡率:IM分別處理K562細胞和K562/G01細胞48h,AnnexinⅤ-FITC和PI進行雙染細胞,應用流式細胞儀檢測細胞的凋亡情況。
2.3 Western-blot法檢測K562細胞及K562/G01細胞的FoxM1、BCR-ABL激酶活性蛋白及DNA
11、損傷標志物的表達:細胞總蛋白提取液分別提取K562細胞和K562/G01細胞的總蛋白,進行SDS-PAGE凝膠電泳,檢測FoxM1、BCR-ABL激酶活性蛋白P-Tyr和P-Crkl及DNA損傷標志物γ-H2AX的表達。
2.4免疫熒光法檢測細胞DNA損傷修復情況:同樣濃度的IM處理K562細胞和K562/G01細胞6小時,利用免疫熒光法檢測細胞中DNA損傷標志物γ-H2AX的表達。
3.研究干預FoxM1表達對CM
12、L細胞生物學行為的影響。
3.1上、下調CML細胞中FoxM1的表達:(1)慢病毒感染細胞:分別應用FoxM1攜帶過表達載體的慢病毒及其過表達對照病毒感染IM敏感細胞株K562;應用攜帶FoxM1干擾片段shRNA的慢病毒及其干擾對照病毒感染IM耐藥細胞株K562/G01。使用嘌呤霉素(puromycin)篩選2周,獲得穩(wěn)定過表達或低表達FoxM1的CML細胞株。(2)利用FoxM1的小分子抑制劑下調CML患者CD34+細胞中
13、FoxM1表達:硫鏈絲菌素(Thiostrepton,TST)、硼替佐米(Bortezomib,BTZ)處理K562/G01細胞及CD34+細胞48小時。
3.2 Real-time RT-PCR法檢測干預FoxM1表達后CML細胞的FoxM1及其下游分子的mRNA表達水平。
3.3 Western-blot法檢測干預FoxM1表達后CML細胞的FoxM1分子、BCR-ABL激酶活性蛋白P-Tyr、P-Crkl的表達
14、。
3.4 CCK8法研究干預FoxM1表達后CML細胞IM敏感性的改變:配制不同濃度梯度的IM溶液處理各組細胞,48小時后檢測并計算細胞存活率及IC50值。
3.5流式細胞術檢測干預FoxM1表達后CML細胞株和原代CD34+細胞的凋亡情況:IM處理各組細胞,48小時后收集細胞,AnnexinⅤ-FITC/PI進行雙染后,利用流式細胞儀檢測細胞凋亡情況。
3.6 Western-blot檢測干預FoxM1
15、表達后CML細胞DNA損傷標志物γ-H2AX的蛋白表達水平;免疫熒光法檢測干預FoxM1表達后CML細胞的DNA損傷修復情況:IM處理各組細胞,利用免疫熒光法檢測細胞中DNA損傷標志物γ-H2AX的表達。
4.篩選并鑒定參與CML細胞IM耐藥的FoxM1關鍵下游DNA損傷修復基因。
4.1全基因表達譜芯片法:分別收集FoxM1過表達及FoxM1 shRNA慢病毒處理前后的CML細胞,利用基因芯片檢測各組間差異表達的基
16、因,作為FoxM1調控的參與IM耐藥的候選下游DNA損傷修復基因。
4.2 Real-time RT-PCR法驗證各候選下游DNA損傷修復基因表達:在FoxM1過表達慢病毒感染前后CML細胞中檢測各候選DNA損傷修復基因的mRNA表達水平。選擇一個表達差異顯著的候選下游基因作為目標下游DNA損傷修復基因。
4.3 Western-blot法驗證目標FoxM1目標下游DNA損傷修復基因的表達:細胞總蛋白提取液提取干預F
17、oxM1表達的CML細胞的總蛋白,進行SDS-PAGE凝膠電泳,檢測目標下游DNA損傷修復基因蛋白水平的表達。
5.研究FoxM通過調控目標下游DNA損傷修復基因,對CML細胞生物學行為產生的影響。
5.1質粒及病毒轉染:應用攜帶目標下游DNA損傷修復基因干擾片段shRNA的慢病毒及其干擾對照病毒感染K562/G01細胞;應用LipofectamineTM2000將攜帶目標下游DNA損傷修復基因過表達載體的質粒及其過
18、表達對照質粒轉染FoxM1低表達的K562/G01細胞(感染攜帶FoxM1干擾片段shRNA慢病毒并穩(wěn)定表達的K562/G01細胞)。嘌呤霉素篩選2周后獲得穩(wěn)定過表達或低表達目標下游DNA損傷修復基因的細胞株及其對照細胞株。
5.2 Real-time RT-PCR檢測干預目標下游DNA損傷修復基因后CML細胞中其mRNA表達水平;Western-Blot檢測干預目標下游DNA損傷修復基因后CML細胞中其蛋白表達水平、BCR-
19、ABL激酶活性蛋白P-Tyr。
5.3 CCK8法檢測干預目標下游DNA損傷修復基因后CML細胞對IM的敏感性:IM處理各組細胞48小時后,CCK8法檢測并計算細胞的存活率及IC50值。
5.4流式細胞術檢測干預目標下游DNA損傷修復基因后CML細胞的凋亡情況:IM處理各組細胞,48小時后收集細胞,AnnexinⅤ-FITC/PI進行雙染后利用流式細胞儀檢測細胞凋亡率。
5.5 Western-Blot檢測
20、干預目標下游DNA損傷修復基因后CML細胞中DNA損傷標志物γ-H2AX的蛋白表達水平;免疫熒光法檢測干預目標下游DNA損傷修復基因后CML細胞的DNA損傷修復情況:IM處理各組細胞,6小時后應用免疫熒光法檢測各組細胞DNA損傷標志物γ-H2AX蛋白水平的表達。
實驗結果
1.FoxM1在CML患者及正常對照中的表達。
1.1 FoxM1在CML患者與正常對照中的表達:Real-time RT-PCR結果顯
21、示在初診CML患者中FoxM1 mRNA的表達水平顯著高于正常對照組;FoxM1表達與CML患者疾病分期有關,AP/BP組患者的FoxM1表達水平明顯高于CP組患者;FoxM1表達與IM敏感性有關,初診CP患者經IM治療無效后如進展為AP/BC,其FoxM1表達水平呈上升趨勢;初診CP患者經IM治療后若穩(wěn)定于完全緩解階段,其FoxM1表達水平呈下降趨勢。
1.2 FoxM1在CML干細胞中的表達:FoxM1 mRNA在CML患
22、者CD34+細胞中的表達水平明顯高于CD34-細胞和正常對照組CD34+細胞;在正常對照組CD34+及CD34-細胞的FoxM1 mRNA表達水平差異無統(tǒng)計學意義。
2.所選IM耐藥CML細胞株K562/G01及其敏感株K562對IM的藥物敏感性。
2.1 CCK8法顯示IM耐藥株K562/G01細胞對IM的IC50為IM敏感株K562的約40倍。
2.2流式細胞術顯示IM處理細胞48h后,K562/G01
23、細胞的凋亡率明顯低于K562細胞。
2.3 Western-blot顯示K562/G01細胞中FoxM1、BCR-ABL激酶活性蛋白P-Tyr和P-Crkl的表達明顯高于K562細胞,DNA損傷標志物γ-H2AX表達明顯低于K562細胞。
2.4免疫熒光法顯示K562/G01細胞中DNA損傷標志物γ-H2AX表達明顯低于K562細胞。
3.FoxM1調控CML細胞BCR-ABL激酶活性及IM敏感性檢測。
24、r> 3.1上調IM敏感細胞株K562中FoxM1表達對細胞IM敏感性的影響:Real-time RT-PCR、Western-blot驗證FoxM1 mRNA及蛋白水平上調后,CCK8法顯示細胞存活率升高,IC50值增大;流式細胞術檢測細胞凋亡明顯減少;Western-blot顯示BCR-ABL激酶活性標志P-Tyr、P-Crkl蛋白表達水平升高;Western-blot及免疫熒光顯示DNA損傷標志物γ-H2AX表達水平降低。
25、> 3.2下調IM耐藥細胞株K562/G01中FoxM1表達對細胞IM敏感性的影響:Real-timeRT-PCR、Western-blot驗證FoxM1的mRNA及蛋白水平下調后,CCK8法顯示細胞存活率降低,IC50值減小;流式細胞術顯示細胞凋亡顯著增加;Western-blot檢測BCR-ABL激酶活性標志P-Tyr、P-Crkl蛋白表達水平降低;Western-blot及免疫熒光顯示DNA損傷標志物γ-H2AX表達水平升高。<
26、br> 3.3應用FoxM1的小分子抑制劑下調CML患者骨髓CD34+細胞的FoxM1表達對細胞IM敏感性的影響:Annexin-Ⅴ FITC/PI進行雙染,流式細胞術顯示細胞凋亡明顯增加。
4.鑒定并選擇參與IM耐藥的FoxM1下游關鍵的DNA損傷修復基因。
4.1根據(jù)芯片結果及比較干預FoxM1前后CML細胞中各候選基因mRNA表達水平結果,初步選擇PARP作為FoxM1調控參與IM耐藥的目標下游DNA損傷修復
27、基因。
4.2 IM耐藥細胞株K562/G01中下調PARP的表達:Real-time RT-PCR、Western-Blot驗證PARP的mRNA及蛋白表達水平降低;CCK8法顯示細胞存活率降低,IC50值減小;AnnexinⅤ-FITC/PI雙染流式細胞術顯示細胞凋亡增加;Western-blot、免疫熒光顯示DNA損傷標志物γ-H2AX表達水平升高。
4.3 FoxM1低表達的K562/G01細胞中上調PARP
28、的表達:Real-time RT-PCR、Western-Blot驗證PARP的mRNA及蛋白表達水平升高;CCK8法顯示細胞存活率升高,IC50值增大;AnnexinⅤ-FITC/PI雙染流式細胞術顯示細胞凋亡減少;Western-blot、免疫熒光顯示DNA損傷標志物γ-H2AX表達水平降低。
實驗結論
1.FoxM1在初診CML患者中明顯高表達,在不同疾病分期及不同IM療效的CML患者中存在明顯差異表達,提示了
29、FoxM1可能參與CML疾病發(fā)生發(fā)展過程,且可能與CML IM耐藥關系密切。
2.FoxM1在CML患者CD34+細胞中表達量明顯高于其CD34-細胞和正常對照組CD34+細胞,提示FoxM1在維持CML干細胞的存活和自我更新中起一定的作用。
3.FoxM1信號通路可通過促進DNA損傷修復,抑制CML細胞凋亡并增強BCR-ABL激酶活性,從而促進IM耐藥。
4.鑒定出PARP是FoxM1調控參與IM耐藥的下
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