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文檔簡(jiǎn)介
1、第一部分目的:建立提取cfsRNA的有效方法,了解其含量、種類、來源。為進(jìn)一步探索cfsRNA的臨床應(yīng)用價(jià)值及存在意義奠定基礎(chǔ)。
方法:收集精液參數(shù)正常的男性精液標(biāo)本,聯(lián)合應(yīng)用Trizol LS Reagent和Rneasy Kit 提取和純化cfsRNA,RT-qPCR 擴(kuò)增管家基因β-actin (ACTB)比較純化前后RNA 提取效果,建立穩(wěn)定的提取純化技術(shù),RT-qPCR 擴(kuò)增ACTB分析精液參數(shù)正常男性cfsRN
2、A 含量,并通過瓊脂糖凝膠電泳和Agilent 2100Bioanalyze(Lab on chip)的雙重檢測(cè),驗(yàn)證cfsRNA質(zhì)量及種類。用Affymetrix 公司的HumanGene 1.0ST Array,分析精液參數(shù)正常的男性cfsRNA的mRNA種類及來源。
結(jié)果:聯(lián)合應(yīng)用Trizol LS Reagent和Rneasy Kit 提取和純化的cfsRNA,用于熒光定量RT-PCR 所得到的ct值比不純化所提取
3、cfsRNA 明顯提前,差異有顯著性意義(P<0.01)。對(duì)10例精液參數(shù)正常標(biāo)本分析,cfsRNA 含量范圍為每毫升精漿0.87 μg 到3.64 μg,RNA分子完整性指數(shù)RIN(RNA Integrity Number)
為6.4。28S與18S 倒置,比值為0.6。Agilent 2100Bioanalyze的結(jié)果分析說明cfsRNA 可能種類繁多,包括28S rRNA, 18S rRNA和小分子RNA(如5S r
4、RNA,tRNA,microRNA等)及在這一范圍間大量存在的大小不等的mRNA分子。
cfsRNA 芯片分析結(jié)果共20106種轉(zhuǎn)錄子存在,已知基因14,575個(gè),其中12,089為已知基因,并有基因表達(dá)信息,其余為假基因、未知功能轉(zhuǎn)錄、小RNA等。
芯片結(jié)果表達(dá)信息提示cfsRNA 來源于多個(gè)男性生殖器官,其中前列腺表達(dá)而睪丸不表達(dá)2,009個(gè),睪丸表達(dá)而前列腺部表達(dá)1,529個(gè),前列腺和睪丸均表達(dá)2,51
5、8個(gè),其余6,033個(gè)不在睪丸和前列腺中表達(dá)。
結(jié)論:聯(lián)合應(yīng)用Trizol LS Reagent和Rneasy Kit 可獲得大量cfsRNA,能應(yīng)用于microarray、northern-blot、RT-PCR等技術(shù)。Cfs-mRNA種類繁多,來源于多個(gè)男性生殖器官??赡艹蔀榫珴{來源器官某些疾?。ㄈ缒[瘤、基因表達(dá)異常所致疾病等)的無創(chuàng)性診斷、性犯罪法醫(yī)鑒定等方面的新分子標(biāo)志物。
第二部分,目的:考慮到上述
6、應(yīng)用前景和優(yōu)勢(shì),研究cfs-mRNA的一般特性是否滿足分子檢測(cè)技術(shù)的基本要求。本部分主要是研究精液正常男性cfs-mRNA的完整性、穩(wěn)定性、是否與其他物質(zhì)結(jié)合存在。本部分的完成將為進(jìn)一步研究病理情況下cfs-mRNA及其應(yīng)用研究奠定嚴(yán)謹(jǐn)?shù)膶?shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
方法:本部分采用分析mRNA的完整性的公認(rèn)的方法,即針對(duì)mRNA不同部位:分別設(shè)計(jì)可擴(kuò)增全長(zhǎng)及針對(duì)5′端、3′端及中段片段的引物,收集精液參數(shù)正常的精漿標(biāo)本9例,通過RT-qP
7、CR的方法定量比較ACTB、DDX4 mRNA 各自5′端、3′端及中段片段的量的差異,以轉(zhuǎn)錄子5′端為1,分析其3′端及中段相對(duì)5′端的比例,從而反映mRNA的完整性。在室溫下靜置,分別于0min、20min、45 min、90min及24 h取出400μl精漿,提取cfsRNA,熒光定量RT-PCR檢測(cè)人ACTB、DDX4 mRNA不同片段的量變及大鼠ACTB mRNA的量變規(guī)律。
為分析cfsRNA是否以與大分子結(jié)合
8、形式存在而逃避精漿RNA酶的降解作用,精液參數(shù)正常男性精漿標(biāo)本分別通過直徑分別是5.0μm、0.45 μm、0.22 μm的濾膜分別過濾,運(yùn)用熒光定量RT-PCR觀察過濾前后ACTB、DDX4 mRNA的量變規(guī)律。由于Triton X-100可以分解大分子結(jié)合物質(zhì),我們收集5人精漿,分為兩等份,一份加TritonX-100(終濃度為10ml/L)以分解蛋白質(zhì)、脂類等物質(zhì),室溫下靜置20min,另一份在提取RNA時(shí)加入TRIzol LS后
9、加入,分別于0、5、10、20min時(shí)取400μl精漿,熒光定量RT-PCR分析精漿ACTB、DDX4 mRNA的量變規(guī)律。
結(jié)果:相對(duì)于ACTB mRNA的5′端,其中段片段的相對(duì)量為71%(P<0.05),3′端片段的相對(duì)量減少到24.2%(P<0.001)。相對(duì)于DDX4 mRNA的5′端(100%),其中段片段的相對(duì)量為48.4%(P<0.05),其3′端片段的相對(duì)量減少到2.0%(P<0.001)。結(jié)果說明cfs
10、-mRNA可能主要以片段形式存在,而主要可能從mRNA3′端開始降解。
精漿在室溫下靜置不同時(shí)間后,較0min時(shí)間ACTB mRNA的量,ACTB mRNA的5′端、3′端及中段在24 h內(nèi)均無明顯減少(P>0.05),說明ACTB mRNA是穩(wěn)定的。DDX4 mRNA的5′端在24 h內(nèi)穩(wěn)定(P>0.05),而DDX4 mRNA中段的含量在90min時(shí)開始慢慢減少,24 h后已經(jīng)降解到最初的25.8%(P<0.01,)3
11、′端含量在20min已降到了27.4%,90min時(shí)已檢測(cè)不到(P<0.001)。
精漿通過5.0μm的濾膜,與未過濾組比較,5.0μm的濾膜對(duì)ACTB、DDX4mRNA水平均無影響,表明沒有殘余細(xì)胞的影響。而與未過濾組比較,通過0.45μm、0.22 μm的濾膜后ACTB mRNA分別減少到55.2%和27.2%,DDX4 mRNA分別減少到56.0%和39.4%(P<0.05),說明精漿過濾后cfs-mRNA減少可能主
12、要是與大分子結(jié)合存在。為進(jìn)一步證實(shí)cfs-mRNA穩(wěn)定性與復(fù)合物結(jié)合有關(guān),我們向精漿標(biāo)本中加入Triton X-100,cfs-mRNA穩(wěn)定性明顯下降,在室溫條件下處理10min,20min后,ACTB mRNA5′端水平下降到6.1%和2.3%, DDX4 mRNA5′端水平10min后已檢測(cè)不到。說明RNA-分子復(fù)合物結(jié)合是cfs-mRNA穩(wěn)定存在與精漿中的關(guān)鍵機(jī)制。
結(jié)論:精漿中有完整的cfs-mRNA存在,但主要以
13、片段形式存在,且可能從mRNA3′端開始降解。Cfs-mRNA可能是以與大分子物質(zhì)形成復(fù)合物而存在于精漿中,盡管cfsRNA在精漿中相對(duì)穩(wěn)定,但我們建議后續(xù)的研究或臨床應(yīng)用中為保證更好的cfsRNA質(zhì)量,獲得精漿標(biāo)本后應(yīng)立即放置液氮或-80℃保存,尤其是要對(duì)3′端分析時(shí)。
目的:由于cfsRNA大量存在于精漿中,且精漿小體(seminAlmicroparticles,SMPs)已被證實(shí)是穩(wěn)定且大量的精漿物質(zhì)之一。我們推測(cè)c
14、fsRNA可能存在于來自不同男性生殖器官來源的SMPs中,后者是保護(hù)游離保護(hù)游離RNA不被環(huán)境中RNA酶降解的物質(zhì)。
方法:精液標(biāo)本選自精液參數(shù)正常的男性及嚴(yán)重少精子癥患者。分離SMPs并通過透射電鏡觀察形態(tài),為獲得包裹在SMPs內(nèi)的cfsRNA,分別將RNA 酶A加入從15例精液參數(shù)正常男性及10例嚴(yán)重少精子患者分離得到的SMPs 重懸液中,濃度為100μg/ml,37℃水浴15 min,以去除SMPs表面或是裸露存在的
15、cfsRNA。繼續(xù)加入0.25%的胰酶37℃水浴15 min 以分解SMPs 外的RNA-蛋白質(zhì)復(fù)合物。分離純化以SMPs 形式存在的cfsRNA, 選擇管家基因及男性生殖系統(tǒng)特異mRNA 指標(biāo)進(jìn)行RT-PCR 擴(kuò)增,分析SMPs內(nèi)是否存在cfsRNA 以及相應(yīng)比例。由于SMPs大小為直徑30nm~1.0μm 之間,將6例精液參數(shù)正常男性的SMPs 重懸液分為過濾組及未過濾組,過濾組分別通過直徑分別是0.8 μm、0.45μm、0.22
16、 μm及0.10μm的濾膜,運(yùn)用熒光定量RT-PCR,觀察與未過濾組比較,過濾不同孔徑濾SMPs內(nèi)cfsRNA的量變規(guī)律。
結(jié)果:SMPs 懸液的透射電鏡觀察顯示為圓形或橢圓形微小結(jié)構(gòu),大小不等,可成簇分布。在精液參考值正常男性cfsRNA及其SMPs 形式(smpRNA)中,六個(gè)基因:ACTB, DDX4, PRM2, DEFB129, SERPINA5及TGM4的檢出率均為100%。對(duì)于精液正常男性及嚴(yán)重少精子癥患者,
17、比較總cfsRNA與SMPs 形式存在的cfsRNA的量,ACTB, DDX4, PRM2, DEFB129, SERPINA5和TGM4 mRNA水平無明顯的降低,說明絕大多數(shù)cfsRNA 以SMPs 形式存在,足以穩(wěn)定被檢出。
由于SMPs大小為直徑30nm-1.0μm 之間,精漿通過0.8 μm、0.45 μm、0.22 μm及0.10μm的濾膜后不同基因cfsRNA 含量都有一定程度減少(P<0.01)。
18、 結(jié)論:精液參數(shù)正常男性及嚴(yán)重少精子癥患者卻大部分cfsRNA 存在于SMPs中,從而保護(hù)不被精漿RNA 酶降解,是潛在的診斷疾病的新分子標(biāo)志物。這一形式的RNA 物質(zhì)是否也可以通過融合進(jìn)入精子細(xì)胞發(fā)揮功能,有待進(jìn)一步研究。
第三部分,目的:本部分首先通過RT-qPCR 定量附睪游離mRNA在附睪小體中的含量,參考文獻(xiàn)選擇并用RT-PCR證實(shí)小鼠附睪尾部表達(dá)而附睪頭部區(qū)域不特異性表達(dá)基因:Crisp1。通過體外實(shí)驗(yàn)觀察
19、Crisp1mRNAs是否存在于附睪小體中,并能通過附睪小體進(jìn)入附睪頭部精子。
方法:取10~12周齡BALB/c 雄性小鼠雙側(cè)附睪頭、尾部,分離精子及附睪小體。將附睪上清液分成兩份,分別用于提取附睪游離RNA(cfeRNA)和附睪小體RNA,用RT-qPCR,通過分析附睪特異性表達(dá)基因:Adam7、Crisp1、Wfdc2、Wfdc9、Defb22,定量比較附睪游離mRNA和附睪小體中的mRNA 含量。
將
20、超高速離心法獲得的附睪尾部小體與附睪頭部精子用PBS 液37℃共孵育1h,通過RT-PCR 檢測(cè)附睪尾部Crisp1mRNAs是否在孵育后的附睪頭部精子中檢測(cè)到,同時(shí),以附睪頭部未孵育的精子為陰性對(duì)照,以附睪尾部精子為陽性對(duì)照組。通過原位雜交-免疫電鏡觀察附睪尾部小體遞入Crisp1mRNAs的定位。
結(jié)果:RT-qPCR 定量分析附睪游離Adam7、Crisp1、Wfdc2、Wfdc9、Defb22mRNA在附睪小體中的
21、比例, 結(jié)果顯示附睪小體內(nèi)mRNA與游離形式mRNA水平無明顯差異;通過RT-PCR的方法,分別在小鼠附睪頭、尾小體中發(fā)現(xiàn)附睪頭部小體不含Crisp1mRNA,主要在附睪尾部小體表達(dá),推測(cè)附睪尾部上皮區(qū)域特異性表達(dá)Crisp1mRNA。分別觀察小鼠附睪頭、尾精子,發(fā)現(xiàn)附睪頭部精子不含Crisp1mRNA,主要在附睪尾部精子中表達(dá)。附睪頭部精子與附睪體尾部小體孵育后,可檢測(cè)到Crisp1mRNA,主要表達(dá)于頂體及尾部中段,其胞漿小滴未消失
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