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文檔簡介
1、背景:
干細胞治療是一種新興的心肌缺血損傷后修復(fù)的再生醫(yī)學(xué)治療模式。然而,干細胞在體外擴增后移植到缺血心臟,面臨移植所致心律失常、多能干細胞在體定向分化不可控、致瘤風(fēng)險以及干細胞的遠期存活率低等問題。近年來發(fā)現(xiàn)并完善的轉(zhuǎn)分化策略,有望從一定程度上解決上述問題。轉(zhuǎn)分化依賴于特異性的轉(zhuǎn)錄因子或化學(xué)誘導(dǎo)實現(xiàn)體細胞譜系轉(zhuǎn)變,繞過了多能性狀態(tài),相對高效和安全。但該方法本身無法避免病毒載體轉(zhuǎn)染引起的基因修飾,限制了該方法獲得期望的細胞類型
2、及其產(chǎn)品的治療性應(yīng)用。而小分子因為其快速、方便使用、無外源基因整合、效應(yīng)可逆等特點在轉(zhuǎn)分化中是一種替代譜系特異性轉(zhuǎn)錄因子的較好的選擇。但由于小分子在重編程中的應(yīng)用是一個新興的、發(fā)展的話題,迄今為止,心血管領(lǐng)域相關(guān)小分子策略的研究都是孤立的、前驅(qū)性的,其在轉(zhuǎn)分化中的作用機制及分子路線圖有待于未來進一步闡明,更多的研究需要去驗證目前的發(fā)現(xiàn)和評估只使用小分子的完全化學(xué)轉(zhuǎn)分化來產(chǎn)生不同譜系細胞類型的可能性。因此,本實驗研究旨在模擬急性心肌梗死環(huán)
3、境,調(diào)查血清剝奪刺激是否可以激活心肌成纖維細胞向內(nèi)皮細胞轉(zhuǎn)分化。
方法:
我們?nèi)57/BL新生小鼠(出生1-3天)新鮮分離心臟組織,獲取成纖維細胞進行細胞培養(yǎng),用淋巴細胞抑制因子(LIF)促進成纖維細胞自我更新、長程維持干性和抑制其向終末分化。將第3代的成纖維細胞分為5組:對照組(DMEM+10%FBS)血清饑餓24h組(DMEM+0%FBS)、血清饑餓48h組(DMEM+0%FBS)、血清饑餓72h組(DMEM+
4、0%FBS)、血清饑餓48小時且不添加LIF(DMEM+0%FBS)。各組細胞在不同處理后,分別采用qPCR法、體外血管生成試驗和Dil標(biāo)記-乙?;兔芏戎鞍祝―il-Ac-LDL)吞噬功能試驗來檢測細胞譜系特異性基因變化、體外血管新生能力和內(nèi)皮細胞標(biāo)記性的功能,采用ELISA的方法檢測血清饑餓后成纖維細胞分泌VEGF的情況。
結(jié)果:血清饑餓組內(nèi)皮細胞特異性基因CD31陽性表達的細胞是對照組的22倍,ve-herin陽性表達
5、的細胞是對照組的50倍,P<0.05。經(jīng)歷3個不同的時間的血清饑餓刺激后,血清饑餓48小時組內(nèi)皮基因提高最明顯,是血清饑餓72小時組的7.7倍,P<0.05。和對照組比較,血清饑餓24小時組ve-herin表達無顯著提高,P>0.05。此外,F(xiàn)bs獲得了一定的內(nèi)皮細胞的功能,和對照組相比,倒置熒光顯微鏡下觀察血清剝奪組Fbs形成微血管結(jié)構(gòu)和分泌VEGF的能力顯著提高。
結(jié)論:
血清剝奪刺激可以激活心肌成纖維細胞向內(nèi)皮
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