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文檔簡介
1、結腸癌是胃腸道常見的惡性腫瘤,作為第三大常見腫瘤,每年大概有超過一百萬的患者被確診為結腸癌。近年來,結腸癌的發(fā)病率和死亡率逐年遞增,在我國表現(xiàn)尤為突出,達到甚至超過了西方國家水平;我國結腸癌的高發(fā)年齡為50-60歲,比西方國家早10歲[1]。即便近年來結腸癌的診斷和治療取得了飛躍性的進展,但是其具體的病理機制仍然不太清楚。所以,深入研究結腸癌發(fā)病的分子機制和細胞機制,為結腸癌的早期診斷和靶向治療提供理論依據(jù)和線索很有必要。
磷
2、酸葡萄糖異構酶(Glucose phosphate isomerase,GPI)廣泛分布于人體各組織中,是細胞內(nèi)糖酵解和糖異生過程中的關鍵酶,可促進6-磷酸葡萄糖(glucose-6-phosphate)和6-磷酸果糖(fructose-6-phosphate)相互轉換。當GPI被分泌到胞外,作為自分泌活動因子(autocrine motility factors,AMF),以自分泌的形式與細胞自身或鄰近細胞表面受體(autocrine
3、 motility factor receptor,AMFR)相結合影響細胞的增殖、凋亡、遷移等。研究表明,GPI/AMF在乳腺癌,腎癌,肺癌,子宮內(nèi)膜瘤,骨肉瘤,胃腸道腫瘤等多種腫瘤中呈高表達狀態(tài)[2-6],在結腸癌患者的尿液和血清中,GPI/AMF的水平較正常人升高[7]。大量文獻報道,GPI不僅與腫瘤的發(fā)生和分級密切相關,還能影響腫瘤細胞的凋亡、遷移及浸潤等[6,8-10]。
水通道蛋白(Aquaporins,AQPs)
4、家族成員與腫瘤的發(fā)生發(fā)展息息相關,Chulso Moon等人報道AQP1、AQP3、AQP5在HCT-116、HT-20、SW480等7種結腸癌細胞中表達[11]。其中,AQP3在呼吸系統(tǒng)(氣道、肺等)、消化系統(tǒng)(胃、結腸)、泌尿系統(tǒng)、感覺器官(眼、淚腺)中均有表達。AQP3的激活可以使某些腫瘤細胞遷移能力變強(如胰腺癌細胞株MPC-83)。在結腸癌中,癌組織AQP3的表達也明顯高于癌旁組織。AQP3在淋巴結轉移、組織的分化程度和遠處轉
5、移中發(fā)揮了重要作用。眾所周知,PI3K/AKT信號通路普遍存在于各種細胞中,與腫瘤的發(fā)生發(fā)展密切相關。在結腸癌中,PI3K/AKT信號通路的反常激活[12],能夠調(diào)控下游基質(zhì)金屬蛋白酶(Matrix Metalloproteinases,MMPs)等基因,從而影響腫瘤細胞的浸潤、遷移等過程[13-14]。研究還發(fā)現(xiàn)PI3K/AKT信號通路在hEGF誘導AQP3表達中也扮演了重要角色[15]。
因此,我們設想下調(diào)GPI/AMF是
6、否能影響結腸癌細胞 HCT-116的凋亡和遷移?人結腸癌 HCT-116細胞的遷移是否與AQP3相關PI3K/AKT信號通路在此過程中是否起到至關重要的作用?
目的:
本文以人結腸癌細胞株為研究對象,篩選出GPI高表達細胞株。嘗試探索GPI對結腸癌細胞凋亡,遷移,浸潤及AQP3表達水平的影響,并探討其對遷移及浸潤影響的可能機制,為靶向 GPI治療結腸癌提供研究線索和實驗依據(jù)。
方法:
運用RT-P
7、CR和Western-blot分別檢測常規(guī)培養(yǎng)的人結腸癌細胞株HT-29、HCT-116、SW480及caco2中GPI的mRNA和蛋白表達情況,篩選GPI高表達的結腸癌細胞株;CCK-8法確定篩選GPI穩(wěn)定轉染HCT-116細胞株的嘌磷霉素濃度;慢病毒質(zhì)粒感染構建干擾 GPI的HCT-116細胞,嘌磷霉素篩選穩(wěn)定感染細胞株后,于熒光顯微鏡下觀察轉染效率;Western-blot和RT-PCR法檢測感染前后GPI表達水平;采用FCM(F
8、low cytometry)法檢測干擾GPI前后HCT-116細胞株的周期和凋亡情況;劃痕實驗檢測干擾GPI對HCT-116細胞遷移的影響;Transwell檢測干擾GPI對HCT-116細胞遷移及浸潤的影響;Western-blot檢測細胞周期調(diào)控蛋白Cyclin D1,促凋亡蛋白Bax,抗凋亡蛋白Bcl-2,抑癌蛋白p53和激活型caspase3,遷移相關蛋白基質(zhì)金屬酶MMP3、MMP9,水通道蛋白AQP3,PI3K/AKT信號通路
9、蛋白PI3K、AKT、p-AKT的表達。通過分別設立PI3K/AKT特異性抑制劑LY294002,干擾GPI單獨或聯(lián)合應用來探究GPI/AMF,PI3K/AKT信號通路與MMP3、MMP9、AQP3之間的上下游關系。
結果:
1. RT-PCR和Western-blot結果顯示:HT-29、HCT-116、SW480、caco2四株結腸癌細胞株中,GPI的 mRNA和蛋白表達量最高的是HCT-116細胞,故后續(xù)實驗選
10、用HCT-116細胞為實驗對象。
2.CCK-8結果顯示:0.8μg/mL的嘌磷霉素,對HCT-116細胞的抑制率接近95%。故選用0.8μg/mL的嘌磷霉素進行干擾GPI穩(wěn)定感染株的篩選。
3.成功構建干擾GPI的慢病毒質(zhì)粒,HCT-116細胞感染重組質(zhì)粒后,嘌磷霉素篩選,于熒光顯微鏡下觀察,發(fā)現(xiàn)siGPI組的細胞幾乎全被慢病毒感染;siGPI組GPI基因的mRNA及蛋白表達水平下調(diào)。RT-PCR結果顯示,與par
11、ental組比較,siGPI組細胞的GPI mRNA的抑制率為30.0%,有顯著性差異(P<0.05),mock組與parental組相較無明顯差異(P>0.05);Western-blot結果顯示:與parental組比較,siGPI組細胞GPI蛋白抑制率為55.0%,有顯著性差異(P<0.05),mock組與parenta組相較無明顯差異(P>0.05)。
4.FCM檢測細胞周期:siGPI組細胞G0/G1期所占比例(65
12、.81±2.16)%明顯高于與 parental組(58.07±1.69)%(P<0.05),mock組(59.03±2.76)%與parental組比較無顯著性差異(P>0.05);與parental組相較,siGPI組的G2/M期和S期的細胞占比數(shù)量明顯降低,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
5.FCM檢測細胞凋亡:siGPI組細胞凋亡率(24.74±4.75)%明顯高于parental組(8.48±1.97)%(P<
13、0.05),mock組(9.67±1.71)%與parental比較無顯著性差異(P>0.05)。
6.Western-blot檢測周期蛋白及凋亡蛋白:與parental組比較,siGPI組細胞周期蛋白Cyclin D1和凋亡抑制蛋白Bcl-2的表達下調(diào),抑癌蛋白p53、促凋亡蛋白Bax和Cleaved-caspase3的表達上調(diào),且均有顯著性差異(P<0.05),mock組與parental組比較無顯著性差異。
7
14、.劃痕實驗結果顯示:與parental組比較,siGPI組細胞遷移速度減慢,mock組與parental組比較,細胞遷移速度無明顯差別;干擾GPI、LY294002單獨或聯(lián)合應用均會使得細胞遷移速度變慢。特別是當干擾GPI和LY294002聯(lián)合應用時,細胞遷移速度變得更為緩慢。
8.Transwell結果顯示:與parental組比較,siGPI組的穿膜細胞數(shù)明顯減少,mock組與parental組相較,穿膜的細胞數(shù)量無明顯變
15、化;干擾GPI、LY294002單獨或聯(lián)合應用均會使得穿膜細胞數(shù)量減少。特別是當干擾GPI和LY29002聯(lián)合應用時,穿膜細胞的數(shù)量減少的更為明顯。
9.Western-blot檢測遷移相關蛋白及PI3K/AKT信號通路相關蛋白:與parental組比較,siGPI組細胞遷移相關蛋白MMP3、MMP9、水通道蛋白AQP3、PI3K/AKT信號通路蛋白PI3K、p-AKT的蛋白水平均明顯下調(diào)(P<0.05),AKT蛋白表達量無明
16、顯變化。
10.Western-blot檢測LY294002和GPI siRNA單獨或聯(lián)合誘導結腸癌細胞后相關蛋白表達情況:LY294002可以抑制PI3K/AKT信號通路的激活,同時下調(diào)MMP3、MMP9、AQP3蛋白的表達,但對GPI蛋白的表達沒有明顯影響。與LY294002單獨處理結腸癌細胞比較,干擾GPI和LY294002聯(lián)合處理細胞時,GPI、MMP3、MMP9、AQP3、PI3K、p-AKT蛋白水平明顯降低(P<0
17、.05),AKT蛋白量無明顯變化;與siGPI比較,干擾GPI和LY294002聯(lián)合應用時,MMP3、MMP9、AQP3、PI3K、p-AKT蛋白水平均顯著下降(P<0.05),GPI、AKT蛋白表達量無明顯變化。
結論:
1.下調(diào)結腸癌細胞GPI后,細胞周期被阻滯于G0/G1期,并能誘導結腸癌細胞凋亡。其可能的機制是通過激活p53信號通路,抑制周期蛋白Cyclin D1的表達,同時擾亂Bcl-2/Bax比例,激活c
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