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文檔簡介
1、目的:研究HBV抗原對正常人淋巴細胞凋亡的影響及胸腺肽a1抑制HBV抗原誘導(dǎo)淋巴細胞凋亡的作用,并探討其意義。 方法: (一)淋巴細胞的分離: 取健康人靜脈血,肝素抗凝,用1640培養(yǎng)液對倍稀釋,緩緩加到淋巴細胞分離液上層,離心,吸取淋巴細胞,洗滌后用1640培養(yǎng)液配成2×106/ml的細胞懸液。 (二)HBV陽性血清(HBV(+)S)誘導(dǎo)淋巴細胞凋亡的實驗: 將淋巴細胞懸液分為四組:①胎牛血清(
2、FCS)對照組:0.9ml淋巴細胞懸液+0.1ml FCS;②正常人血清(NHS)對照組:0.9ml淋巴細胞懸液+0.1ml NHS;③HBV(+)S實驗組:0.9ml淋巴細胞懸液+0.1ml HBV(+)S(不同HBV DNA含量:2.33×107 copy/ml、3.47×108 copy/ml、4.70×109 copy/ml);④地塞米松(DEX)陽性對照組:0.9ml淋巴細胞懸液+0.1ml FCS+DEX(終濃度為1×10-
3、5mol/L),每組設(shè)6個平行孔。將各組細胞接種于12孔細胞培養(yǎng)板,置37℃、5%CO2、飽和濕度的培養(yǎng)箱孵育,于培養(yǎng)不同時間收集培養(yǎng)細胞,分別用瑞氏染色法及原位缺口末端標記法(TdT-mediated dUTP-biotin nick end labeling,TUNEL)觀察凋亡淋巴細胞形態(tài),計算凋亡率;流式細胞儀(FCM)碘化丙啶(PI)染色法分析亞二倍體峰,計算凋亡率。 同時設(shè)新鮮淋巴細胞對照組:取新分離淋巴細胞,不經(jīng)培
4、養(yǎng),直接用上述方法檢測淋巴細胞凋亡情況。 (三)胸腺肽疊a1(Ta1)對淋巴細胞凋亡影響的實驗: 實驗分組與上述相同,再于各組分別加入不同劑量的Ta1(終濃度分別為:0μg/ml、10μg/ml、50μg/ml與1O0μg/ml),每組設(shè)6個平行孔,其它步驟同前,于培養(yǎng)72h收集培養(yǎng)細胞,采用流式細胞儀檢測淋巴細胞凋亡率。 結(jié)果: (一)凋亡淋巴細胞的特征: 光學(xué)顯微鏡觀察凋亡細胞形態(tài)主要特征為:
5、用瑞氏染色法光鏡下可見細胞核染色質(zhì)濃縮,邊聚及形成凋亡小體;TUNEL染色光鏡下可見凋亡淋巴細胞核染棕褐色; 流式細胞術(shù)檢出凋亡特征性亞二倍體峰。 (二)HBV抗原誘導(dǎo)淋巴細胞凋亡的實驗結(jié)果: HBV(+)S實驗組凋亡率明顯高于NHS對照組及FCS對照組,差異具有顯著性(P<0.01),提示HBV(+)S促進淋巴細胞凋亡作用強于NHS,其凋亡率隨HBV DNA.含量的升高而增加,低劑量組(HBV DNA含量為2.33×1
6、07 copy/ml)、中劑量組(HBV DNA含量為3.47×108copy/ml)、高劑量組(HBV DNA含量為4.70×109 copy/ml)之間比較差異有顯著意義(P<0.01)。其凋亡率與HBV DNA含量呈正相關(guān)(r=0.813。P<0.01),并且細胞凋亡率的升高具有時間依賴性,未經(jīng)培養(yǎng)的淋巴細胞幾乎不出現(xiàn)凋亡,隨著培養(yǎng)時間的延長凋亡率逐漸升高,培養(yǎng)24h、48h、72h組間比較,差異有顯著性(P<0.01),淋巴細胞
7、凋亡率與時間呈正相關(guān)(r=0.846,P<0.01)。 (三)Tal抑制HBV誘導(dǎo)淋巴細胞凋亡實驗結(jié)果: 在FCS對照組、NHS對照組及HBV(+)S組分別加入中、高劑量Tal(50μg/ml、100μg/ml)時,與未加藥組(0μg/ml)比較,均顯示出明顯抑制淋巴細胞凋亡的作用(P<0.01);但加入低劑量Tal(10μg/ml)時,僅有HBV(+)S組顯示出明顯抑制淋巴細胞凋亡的作用(P<0.01),而NHS及FC
8、S對照組與相應(yīng)未加藥組(0μg/ml)比較,未出現(xiàn)明顯抑制淋巴細胞凋亡的作用(P>0.05)。Tal不同劑量組間比較差異有顯著性意義(P<0.01),Tal對淋巴細胞凋亡抑制作用呈劑量依賴性,其藥物濃度與淋巴細胞凋亡率呈負相關(guān)(r=-0.683,P<0.01)。 結(jié)論: ①本實驗成功地建立了檢測淋巴細胞凋亡的實驗方法,包括瑞氏染色法、TUNEL染色法、流式細胞儀術(shù)(PI染色)。 ②首次采用多種檢測細胞凋亡的方法較
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