皮質(zhì)酮預(yù)處理對(duì)脂多糖激活小膠質(zhì)細(xì)胞的調(diào)節(jié)作用及雞豆黃素A的保護(hù)作用.pdf_第1頁(yè)
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文檔簡(jiǎn)介

1、帕金森病(Parkinson’s disease,PD)是一種常見(jiàn)的好發(fā)于中老年人的中樞神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾病,病理特征是多巴胺(dopamine,DA)神經(jīng)元進(jìn)行性變性、凋亡。目前關(guān)于該病的確切發(fā)病機(jī)制尚不知曉,但神經(jīng)炎癥與PD的發(fā)生有著密切的關(guān)系。抑郁癥是一種全球性精神疾病,且發(fā)病率呈現(xiàn)逐年上升的趨勢(shì),目前研究顯示神經(jīng)炎癥可以促進(jìn)抑郁癥的發(fā)生、發(fā)展。研究顯示慢性不可預(yù)見(jiàn)性應(yīng)激(Chronc Unpredictable Mide Stre

2、ss,CUMS)導(dǎo)致的下丘腦-垂體-腎上腺軸(Hypothalamic–pituitary–adrena axis, HPA)軸亢奮,皮質(zhì)酮(Corticosterone,CORT)分泌異常可致抑郁的發(fā)生。另外也有研究發(fā)現(xiàn)抑郁患者較非抑郁患者更易罹患PD,揭示抑郁可能為PD的獨(dú)立危險(xiǎn)因素。雞豆黃素A(Biochanin A,BioA)作為植物類雌激素可以抑制小膠質(zhì)細(xì)胞的活化,但在抑郁伴PD模型中是否有這樣的作用及其可能的作用機(jī)制尚不明確

3、。
  目的:研究CORT預(yù)處理對(duì)LPS激活小膠質(zhì)細(xì)胞的調(diào)節(jié)作用,雞豆黃素A對(duì)小膠質(zhì)細(xì)胞活化的抑制作用。
  方法:1.采用MTT法,檢測(cè)LPS對(duì)BV2的激活作用,篩選出適宜的造模濃度。將常規(guī)培養(yǎng)的BV2細(xì)胞分為6組:(1)Control組;(2)LPS(0.01μg/ml)組;(3)LPS(0.1μg/ml)組;(4)LPS(1μg/ml)組;(5)LPS(10μg/ml)組;(6) LPS(100μg/ml)組,除Con

4、trol外,其余每組加入相應(yīng)濃度的LPS孵育36h。
  2.采用MTT法,檢測(cè)雞豆黃素A對(duì)BV2的損傷作用,篩選出適宜的保護(hù)藥物濃度。將常規(guī)培養(yǎng)的BV2細(xì)胞分為6組:(1)Control組;(2)BioA(2.5μM)組;(3)BioA(5μM)組;(4)BioA(10μM)組;(5)BioA(20μM)組;(6) BioA(40μM)組。除Control外,其余每組加入相應(yīng)濃度的BioA孵育36h。
  3.采用Geri

5、ss法檢測(cè)各組細(xì)胞上清液中的NO含量來(lái)觀察不同濃度的皮質(zhì)酮預(yù)處理對(duì)LPS激活小膠質(zhì)細(xì)胞的調(diào)節(jié)作用。將常規(guī)培養(yǎng)的BV2細(xì)胞分為7組:(1) Control組;(2)LPS(1μg/ml)組;(3)CORT(25nM)+LPS(1μg/ml)組;(4) CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)組;(5)CORT(100nM)+LPS(1μg/ml)組;(6)CORT(200nM)+LPS(1μg/ml)組;(7)CORT(400nM)+

6、LPS(1μg/ml)組。除Control外,各組先加入不同濃度的CORT孵育2h,然后各組加入相應(yīng)濃度的LPS(1μg/ml)共同孵育36h。
  4.采用Geriss法檢測(cè)各組細(xì)胞上清液中的NO含量來(lái)觀察皮質(zhì)酮預(yù)處理對(duì)LPS激活小膠質(zhì)細(xì)胞的調(diào)節(jié)作用及BioA對(duì)細(xì)胞的保護(hù)作用。將常規(guī)培養(yǎng)的BV2細(xì)胞分為5組:(1)Control組;(2)CORT(50nM)組;(3)LPS(1μg/ml)組;(4) LPS(1μg/ml)+CO

7、RT(50nM)組;(5)LPS(1μg/ml)+CORT(50nM)+BioA(5μM)組。除Control外,各組先加入CORT(50nM)孵育2h,然后各組加入相應(yīng)濃度的LPS(1μg/ml)和BioA(5μM)共同孵育36h。
  5.用顯微鏡直接觀察各組細(xì)胞的細(xì)胞形態(tài)變化和DCFH-DA探針?lè)z測(cè)各組細(xì)胞的ROS情況來(lái)檢測(cè)皮質(zhì)酮預(yù)處理對(duì)LPS激活小膠質(zhì)細(xì)胞的調(diào)節(jié)作用及BioA對(duì)細(xì)胞的保護(hù)作用。將常規(guī)培養(yǎng)的BV2細(xì)胞分為5

8、組:(1)Control組;(2)CORT(50nM)組;(3)LPS(1μg/ml)組;(4)LPS(1μg/ml)+CORT(50nM)組;(5) LPS(1μg/ml)+CORT(50nM)+BioA(5μM)組。除Control外,各組先加入CORT(50nM)孵育2h,然后各組加入相應(yīng)濃度的LPS(1μg/ml)和BioA(5μM)共同孵育36h。
  6.用Western-blot法檢測(cè)各組BV2細(xì)胞中5-HTT的蛋白

9、表達(dá)水平。將常規(guī)培養(yǎng)的BV2細(xì)胞分為5組:(1)Control組;(2)CORT(50nM)組;(3)LPS(1μg/ml)組;(4)LPS(1μg/ml)+CORT(50nM)組;(5)LPS(1μg/ml)+CORT(50nM)+BioA(5μM)組。除Control外,各組先加入CORT(50nM)孵育2h,然后各組加入相應(yīng)濃度的LPS(1μg/ml)和BioA(5μM)共同孵育36h后提取蛋白進(jìn)行檢測(cè)。
  7.用West

10、ern-blot法檢測(cè)各組BV2細(xì)胞中GR和MR的蛋白表達(dá)水平。將常規(guī)培養(yǎng)的BV2細(xì)胞分為5組:(1)Control組;(2)CORT(50nM)組;(3)LPS(1μg/ml)組;(4)LPS(1μg/ml)+CORT(50nM)組;(5)LPS(1μg/ml)+CORT(50nM)+BioA(5μM)組。除Control外,各組先加入CORT(50nM)孵育2h,然后各組加入相應(yīng)濃度的LPS(1μg/ml)和BioA(5μM)共同孵

11、育36h后提取蛋白進(jìn)行檢測(cè)。
  8.用Western-blot法檢測(cè)各組BV2細(xì)胞炎癥因子TNF-α、IL-1β和IL-6的表達(dá)水平。將常規(guī)培養(yǎng)的BV2細(xì)胞分為5組:(1)Control組;(2)CORT(50nM)組;(3)LPS(1μg/ml)組;(4)LPS(1μg/ml)+CORT(50nM)組;(5)LPS(1μg/ml)+CORT(50nM)+BioA(5μM)組。除Control外,各組先加入CORT(50nM)孵

12、育2h,然后各組加入相應(yīng)濃度的LPS(1μg/ml)和BioA(5μM)共同孵育36h后提取蛋白進(jìn)行檢測(cè)。
  9.用Western-blot法檢測(cè)各組BV2細(xì)胞中炎癥小體相關(guān)蛋白ASC、Caspase-1和NLRP3的蛋白表達(dá)水平。將常規(guī)培養(yǎng)的BV2細(xì)胞分為5組:(1)Control組;(2)CORT(50nM)組;(3)LPS(1μg/ml)組;(4)LPS(1μg/ml)+CORT(50nM)組;(5)LPS(1μg/ml)

13、+CORT(50nM)+BioA(5μM)組。除Control外,各組先加入CORT(50nM)孵育2h,然后各組加入相應(yīng)濃度的LPS(1μg/ml)和BioA(5μM)共同孵育36h后提取蛋白進(jìn)行檢測(cè)。
  結(jié)果:
  1.與對(duì)照組相比,LPS濃度在1μg/ml以下,細(xì)胞的活力呈現(xiàn)明顯上升的趨勢(shì),當(dāng)濃度在1μg/ml以上時(shí),細(xì)胞的活力又開始出現(xiàn)下降。因而,1μg/ml的LPS是我們實(shí)驗(yàn)所需的適宜的濃度。
  2.雞豆

14、黃素A濃度在5μM時(shí)對(duì)細(xì)胞基本上沒(méi)有損傷的作用,當(dāng)濃度繼續(xù)增加,BioA會(huì)對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生損傷。因而5μM的LPS是我們實(shí)驗(yàn)所需的適宜的濃度。
  3.CORT濃度在50 nM可以促進(jìn)LPS誘導(dǎo)BV2細(xì)胞產(chǎn)生大量的NO,細(xì)胞出現(xiàn)明顯的活化。因而,50 nM的CORT是我們實(shí)驗(yàn)所需的濃度。
  4.LPS(1μg/ml)組BV2細(xì)胞的上清液中NO含量相比于對(duì)照組明顯升高;與LPS(1μg/ml)組相比,CORT(50nM)+LPS(

15、1μg/ml)組BV2細(xì)胞的上清液中NO含量明顯升高;與CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)組相比CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)+BioA(5μM)BV2細(xì)胞的NO含量明顯降低。
  5.與CORT(50nM)組和LPS(1μg/ml)組相比CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)組的細(xì)胞的ROS的表達(dá)量更高,活化狀態(tài)的―阿米巴‖狀細(xì)胞也更多;與CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)組相比CORT(

16、50nM)+LPS(1μg/ml)+BioA(5μM)細(xì)胞的ROS表達(dá)量較低,形態(tài)較趨于正常。
  6.Western-blot檢測(cè)顯示與CORT(50nM)組和LPS(1μg/ml)組相比CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)組細(xì)胞的5-HTT的蛋白表達(dá)量降低;CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)+BioA(5μM)組5-HTT蛋白表達(dá)量較CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)組升高。
  7. Wes

17、tern-blot檢測(cè)顯示與CORT(50nM)組和LPS(1μg/ml)組相比CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)組細(xì)胞的GR的蛋白表達(dá)量降低,MR的表達(dá)量升高;CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)+BioA(5μM)組MR、GR蛋白表達(dá)量與CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)組相比,GR表達(dá)量升高,MR表達(dá)量下降。
  8. Western-blot檢測(cè)顯示與CORT(50nM)組和LPS(1μg/ml

18、)組相比CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)組細(xì)胞的炎癥因子TNF-α,IL-1β和IL-6的蛋白表達(dá)量升高;CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)+BioA(5μM)組上述蛋白與CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)組相比,其蛋白表達(dá)量與上述結(jié)果相反。
  9. Western-blot檢測(cè)顯示與CORT(50nM)組和LPS(1μg/ml)組相比CORT(50nM)+LPS(1μg/ml)組細(xì)胞的NLRP3

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