

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文檔簡介
1、目的:觀察槲皮素(Quercetin,QUE)對體外培養(yǎng)的少突膠質前體細胞(oligodendrocyte precursor cells,OPCs)缺氧缺糖(oxygen/glucose deprivation,OGD)損傷的保護作用,并探討PI3K/Akt信號通路是否參與此過程。
方法:(1)新生1dSprague-Dawley(SD)大鼠大腦皮質混合膠質細胞原代培養(yǎng)8d后,采用恒溫搖床振蕩分離法和差速貼壁法純化培養(yǎng)細
2、胞,3d后行A2B5免疫細胞熒光染色和DAPI染色對細胞及純度進行鑒定。(2)純化的OPCs培養(yǎng)3d后,選用2mmol/LNa2S2O4聯(lián)合低糖培養(yǎng)基建立細胞OGD模型,分別于損傷0.5h、1h和1.5h后在倒置顯微鏡下觀察細胞形態(tài);CCK-8法檢測細胞相對存活率;流式細胞Annexin FITC/PI雙染法檢測細胞凋亡情況;透射電鏡觀察損傷細胞超微結構。(3)觀察QUE對培養(yǎng)3d后的OPCs存活率的影響,實驗分為Control組、1μ
3、mol/LQUE組、3μmol/LQUE組、9μmol/LQUE組、27μmol/LQUE組、81μmol/LQUE組和100μmol/LQUE組,QUE處理細胞12h后CCK-8法檢測細胞相對存活率。(4)觀察QUE共孵育和預孵育對OGD損傷的OPCs保護作用,QUE共孵育法為2mmol/LNa2S2O4聯(lián)合低糖培養(yǎng)基損傷OPCs的同時加入QUE;QUE預孵育法為QUE預處理OPCs3h后撤除QUE并行OGD損傷,以上損傷時間均為1.
4、5h;兩種孵育方法中OPCs均被分為七組即Control組;OGD組;OGD+QUE組,QUE終濃度分別為1μmol/L、3μmol/L、9μmol/L、27μmol/L和81μmol/L;CCK-8法檢測OPCs相對存活率,LDH試劑盒檢測LDH漏出量。(5)觀察QUE共孵育對OGD損傷的OPCs保護作用,將OPCs分為Control組;OGD組;OGD+QUE組,QUE終濃度為3-81μmol/L,以E損傷時間均為1.5h;Hoec
5、hst33258染色檢測OPCs核濃染率、流式細胞AnnexinFITC/PI雙染法檢測OPCs凋亡情況;Western blotting法檢測凋亡及存活相關蛋白(Bcl-2、Bax、cleaved-caspase-3和p-Akt)的表達。(6)為進一步觀察PI3K/Akt信號通路是否參與此保護過程,將OPCs分為Control組;OGD組;OGD+81μmol/LQUE組和OGD+81μmol/LQUE+LY294002組,以上損傷時
6、間均為1.5h;Western blotting法檢測p-Akt的表達。
結果:(1)細胞免疫熒光鑒定顯示大多數(shù)細胞為A2B5陽性其純度達98.14%。(2)2mmol/LNa2S2O4聯(lián)合低糖培養(yǎng)基處理OPCs,形態(tài)學觀察顯示OGD損傷0.5h,大部分細胞突起回縮,胞體變圓,折光性下降,隨損傷時間的延長,OPCs逐漸脫壁,1.5h時只有少數(shù)貼壁細胞。CCK-8法檢測顯示損傷0.5h、1h和1.5h組細胞的存活率顯著降低,
7、與Control組相比均有統(tǒng)計學差異(P<0.05);損傷1.5h組細胞存活率與0.5h組相比,具有統(tǒng)計學差異(P<0.05)。Annexin FITC/PI雙染法檢測顯示,與Control組相比損傷0.5h、1h和1.5h組的存活細胞相對數(shù)量均顯著降低;而早期和晚期凋亡細胞的相對數(shù)量均顯著增加;損傷1.5h組的存活細胞相對數(shù)量與0.5h組和1h組相比,均具有統(tǒng)計學差異(P<0.05)。OPCs損傷1.5h后,電鏡結果顯示細胞線粒體腫脹
8、,有些細胞胞核固縮成塊,細胞器破碎。(3)CCK-8法檢測1-100μmol/L的QUE對正常生長的OPCs相對存活率的影響,與Control組相比結果顯示100μmol/L的QUE孵育OPCs12h后,細胞相對存活率顯著降低(P<0.01),1-81μmol/L的QUE用于后續(xù)實驗。(4)CCK-8法檢測QUE共孵育和預孵育對OGD損傷的OPCs保護作用,結果顯示:3μmol/L、9μmol/L、27μmol/L和81μmol/L的Q
9、UE共孵育能顯著提高OGD損傷的OPCs相對存活率,與OGD組相比均有統(tǒng)計學差異(P<0.05),且相同濃度下共孵育比預孵育保護效果明顯,具有統(tǒng)計學差異(P<0.05)。LDH試劑盒檢測結果顯示:3μmol/L、9μmol/L、27μmol/L和81μmol/L的QUE共孵育能顯著降低OGD損傷的OPCsLDH漏出量,與OGD組相比均有統(tǒng)計學差異(P<0.05),且相同濃度下共孵育比預孵育保護效果明顯,具有統(tǒng)計學籌異(P<0.05)。(
10、5)QUE共孵育處理OGD損傷的OPCs后,Hoechst33258核染色結果顯示3-81μmol/L的QUE能降低核濃染OPCs的相對數(shù)量,與OGD組相比均有統(tǒng)計學差異(P<0.01),且隨QUE濃度增加核濃染OPCs相對數(shù)量逐漸降低。Annexin FITC/PI雙染法檢測顯示:3-81μmol/L的QUE能抑制OGD損傷的OPCs早期凋亡細胞相對數(shù)量,與OGD組相比均有統(tǒng)計學差異(P<0.01),且隨QUE濃度增加早期凋亡細胞相對
11、數(shù)量逐漸降低。(6)Westernblotting結果顯示:3-81μmol/L的QUE共孵育能顯著降低Bax和cleaved-caspase-3的表達,提高Bcl-2和p-Akt的水平,與OGD組相比均有統(tǒng)計學差異(P<0.05),且隨QUE濃度增加Bax和cleaved-caspase-3的表達量逐漸降低,而Bcl-2和p-Akt的表達量逐漸增多。當用P13K特異性抑制劑LY294002預處理OPCs2h后,與OGD+81μmol/
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