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文檔簡介
1、目的:
鑒于ptxA基因在S.mutans抗壞血酸代謝中發(fā)揮的重要作用,為了探究ptxA基因上游的ptxB基因是否也發(fā)揮著類似的作用,并明確它們之間的關系,本研究擬構建ptxB基因缺陷菌株和ptxA、ptxB基因雙重缺陷菌株,及其功能補償菌株,研究上述缺陷菌株和補償菌株在抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中的生長、產酸、耐酸、合成胞外多糖及形成生物膜的能力,明確ptxA、ptxB基因對S.mutans生物學特性的影響。此外,對ptxA、pt
2、xB基因及其鄰近基因的轉錄情況進行分析,以加深對S.mutans抗壞血酸特異性PTS的理解。
第一章 變異鏈球菌ptxA、ptxB基因缺陷菌株及其功能補償菌株的構建
目的:
構建ptxB基因缺陷菌株和ptxA、ptxB基因雙重缺陷菌株,并另外構建ptxA功能補償菌株、ptxB功能補償菌株和ptxA、ptxB功能補償菌株,為后續(xù)研究奠定基礎。
方法:
根據S.mutans UA159全基因
3、組的序列,采用Primer Premier5.0軟件設計目的基因的上下游引物,并PCR擴增上下游片段。以pFW5質粒為載體,通過雙酶切,將上下游片段插入至質粒的兩個多克隆位點中,構建目的基因缺陷的重組質粒。而后,在感受態(tài)刺激肽的作用下,將此重組質粒轉化入野生型S.mutansUA159中,構建基因缺陷菌株。利用類似方法,以pDL278質粒為載體,構建功能補償質粒,而后轉化入相應的基因缺陷菌株中,構建功能補償菌株。
結果:
4、> 經過PCR鑒定和測序鑒定,ptxB缺陷菌株(ptxB-)、ptxAB雙重基因缺陷菌株(ptxAB-)、ptxA功能補償菌株(CptxA-)、ptxB功能補償菌株(CptxB-)和ptxAB功能補償菌株(CptxAB-)構建成功。
第二章 變異鏈球菌ptxA、ptxB基因對其生物學特性的影響
目的:
研究S.mutans UA159、ptxA-菌株、ptxB-菌株、ptxAB-菌株、CptxA-菌株、C
5、ptxB-菌株、CptxAB-菌株在抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中的生長、產酸、耐酸、胞外多糖合成及生物膜形成能力,明確ptxA、ptxB基因對S.mutans生物學特性的影響。
方法:
1.配制抗壞血酸特異性培養(yǎng)基。采用胰蛋白胨-維生素培養(yǎng)基作為基礎培養(yǎng)基,添加濃度為15 mmol/L的抗壞血酸,以提供S.mutans生長所需的碳源。
2.探究各菌株在抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中的生長情況。將S.mutans UA15
6、9、ptxA-菌株、ptxB-菌株、ptxAB-菌株、CptxA-菌株、CptxB-菌株、CptxAB-菌株分別加入至抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中,37℃厭氧培養(yǎng)72 h。期間每隔2h測量各菌液的OD600值,繪制各菌株的生長曲線。
3.探究各菌株在抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中的產酸能力。將7種菌株分別加入至抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中作為實驗組,對照組加入至BHI培養(yǎng)基中,37℃厭氧培養(yǎng)48 h。于培養(yǎng)前、培養(yǎng)24 h后及培養(yǎng)48 h后分別測
7、量各培養(yǎng)基的pH值,計算各菌株培養(yǎng)前后的△pH值。
4.探究各菌株在抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中的耐酸能力。將7種菌株置于抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中,37℃厭氧培養(yǎng)至OD600≈0.3,離心,收集菌胞,加入至pH5.0的抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中,37℃厭氧孵育1h進行酸適應。而后,采用0.1mol/L,pH7.0的甘氨酸溶液洗滌,0.1 mol/L,pH2.8的甘氨酸溶液重懸,并靜置0,15,30,45 min,對細菌進行酸沖擊。隨后,將
8、菌液進行梯度稀釋,涂板,37℃厭氧培養(yǎng)48h后觀察平板上的菌落數。
5.探究各菌株在抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中的生物膜形成能力。將7種菌株分別加入至抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中,并轉移至已放置好無菌蓋玻片的六孔板中,37℃厭氧培養(yǎng)120 h。經過洗滌、干燥,使用SYTO9對細菌形成的生物膜進行染色,激光共聚焦顯微鏡觀察,隨機選擇5個視野進行拍照。使用Image J軟件對所有照片進行分析,計算生物膜平均的覆蓋面積。
6.探究各菌
9、株在抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中的胞外多糖合成能力。將7種菌株分別加入至抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中,并轉移至已放置好無菌蓋玻片的六孔板中,37℃厭氧培養(yǎng)120 h。經過洗滌、干燥,使用Calcofluor White對細菌合成的胞外多糖進行染色,激光共聚焦顯微鏡觀察。
結果:
1.與野生型S.mutans UA159相比,缺陷株的生長能力受到明顯影響。ptxA缺陷菌株的遲緩期延長,其終末菌密度降低。ptxB缺陷菌株與ptxAB
10、雙重基因缺陷菌株在監(jiān)測的72 h內未見明顯增長。ptxA功能補償菌株和ptxAB功能補償菌株可在一定程度上補償缺陷菌株的生長能力,但仍未達到野生株的水平。而ptxB功能補償菌株無法對缺陷菌株的生長能力進行補償。
2.野生株、缺陷株和補償株在BHI培養(yǎng)基中的產酸能力相同,而在抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中不同。培養(yǎng)24 h后,野生株UA159培養(yǎng)基的pH值輕微下降,而三種缺陷菌株培養(yǎng)基的pH值基本不變,與野生株相比,△pH的差異均具有統(tǒng)
11、計學意義(P<0.05)。ptxA、ptxAB功能補償菌株可在一定程度上補償缺陷菌株的產酸能力,但ptxB功能補償菌株卻無法對此進行補償。在培養(yǎng)48 h后,各菌株培養(yǎng)基的pH值進一步下降,且野生株和缺陷株在產酸能力上的差異更加明顯,具有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。
3.經過1 h pH5.0的酸適應和15 min pH2.8的酸沖擊后,三種缺陷菌均無法在瓊脂平板上長出。
4.經SYTO9染色的細菌生物膜呈現綠色。野生
12、株UA159形成的生物膜較為致密,細菌團塊較大,遍布整個視野,覆蓋面積為65.93%。ptxA基因缺陷菌株所形成的生物膜較野生型稀疏,呈網狀結構,存在不規(guī)則圓形或橢圓形大小不一的孔隙,覆蓋面積僅為39.61%。ptxB、ptxAB基因缺陷菌株無法形成具有三維結構的生物膜,細菌呈短鏈狀排列,散在分布,覆蓋面積分別為24.24%和18.57%。ptxA、ptxAB功能補償菌株形成的生物膜與野生株相似,但孔隙較大,而ptxB功能補償菌株無法恢
13、復至野生株的水平。
5.經Calcofluor White染色的細菌胞外多糖呈現藍色。各菌株合成胞外多糖的情況與其形成生物膜的情況類似,胞外多糖的分布與生物膜的分布基本一致。ptxA、ptxB、ptxAB基因缺陷菌株所合成的胞外多糖較野生株明顯減少。
結論:
1.S.mutans的ptxA、ptxB基因與抗壞血酸的轉運代謝密切相關。
2.ptxA、ptxB基因的缺陷可影響S.mutans在抗壞血酸
14、特異性培養(yǎng)基中的生長、產酸、耐酸、胞外多糖合成及生物膜形成能力。
第三章 變異鏈球菌ptxA、ptxB基因及其鄰近基因轉錄情況的研究
目的:
分析S.mutans中ptxA、ptxB基因及其鄰近的sgaT、SMU.273、SMU.274、SMU.275基因的轉錄情況,探究在S.mutans中是否存在與抗壞血酸轉運代謝相關的操縱子。
方法:
1.對ptxA、ptxB基因及其鄰近基因進行PC
15、R分析。提取S.mutans的基因組DNA及總RNA,將其逆轉錄為cDNA。根據S.mutans的全基因組序列,跨越SMU.268與sgaT(a),sgaT與ptxB(b),ptxB與ptxA(c),ptxA與SMU.273(d),SMU.273與SMU.274(e),SMU.274與SMU.275(f),SMU.275與SMU.277(g)設計引物,實驗組以cDNA為模版,陽性對照組以基因組DNA為模版進行PCR反應,反應產物進行瓊脂
16、糖凝膠電泳,觀察實驗組是否出現與陽性對照組大小一致的條帶。
2.qRT-PCR檢測抗壞血酸對S.mutans中ptxA、ptxB基因及其鄰近基因表達的影響。將野生型S.mutans分別置于抗壞血酸或葡萄糖特異性培養(yǎng)基中,厭氧培養(yǎng)至對數生長后期,提取總RNA,逆轉錄為cDNA,以16S rRNA為內參,使用qRT-PCR檢測抗壞血酸對ptxA、ptxB基因及其鄰近基因表達的影響。
3.使用qRT-PCR檢測野生型S.m
17、utans及ptxB基因缺陷菌株中ptxA基因的表達情況。
4.統(tǒng)計學分析。采用SPSS20.0軟件對qRT-PCR的結果進行統(tǒng)計學分析。采用兩獨立樣本t檢驗的方法,P<0.05代表具有統(tǒng)計學差異。
結果:
1.瓊脂糖凝膠電泳顯示,b、c、d、e、f的實驗組在與陽性對照組一致的位置上出現了條帶,而a和g的實驗組未出現條帶。
2.在抗壞血酸特異性培養(yǎng)基中,S.mutans UA159菌株的sgaT,
18、ptxB,ptxA,SMU.273,SMU.274,SMU.275基因的mRNA表達量均顯著上升,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。
3.與野生型S.mutans相比,ptxB基因缺陷菌株中ptxA基因的mRNA相對表達量值明顯下降,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。
結論:
1.S.mutans的ptxA,ptxB基因與其上游的sgaT基因,及其下游的SMU.273,SMU.274,SMU.275基因
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