Thymosin β10、Thymosin β15在肺癌侵襲和轉移過程中的作用.pdf

1、目的： 本研究探討Tβ10和Tβ15在肺癌中的表達，分析它們與各臨床病理因素之間的關系，揭示Tβ10和Tβ15在肺癌細胞侵襲和轉移過程中的作用機制。 實驗材料和方法： 1、69例原發(fā)性非小細胞肺癌癌組織及癌旁正常肺組織標本均來自1980年到2000年在中國遼寧省鞍山腫瘤醫(yī)院實行手術的病人，患者術前均未接受放化療。標本用中性福爾馬林溶液固定，石蠟包埋，制成4μm切片，采用鏈霉素抗生物素蛋白-過氧化物酶免疫組化法檢測

2、組織中Tβ10、VEGF、VEGF-C蛋白表達情況，微血管密度和淋巴管密度。以PBS代替一抗作為陰性對照。 分別用含10％新鮮胎牛血清的RPMI1640或DMEM培養(yǎng)基，在37℃、5％CO2的條件下培養(yǎng)PG-LH7人肺巨細胞癌PG的低轉移亞系、PG-BE1人肺巨細胞癌PG的高轉移亞系、人肺腺癌高轉移細胞系A549。 細胞爬片免疫組織化學染色：培養(yǎng)細胞制作細胞爬片，4％多聚甲醛室溫固定15min，0.2％TritonX-1

3、00處理，采用鏈霉素抗生物素蛋白-過氧化物酶免疫組化法(S-P法)觀察Tβ10蛋白表達情況。 質粒構建和轉染：用含TβlOcDNA全長序列質粒pcDNA3.0-Tβ10)及pcDNA3.0載體構建Tβ10cDNA反義重組質粒pcDNA3.0-as-Tβ10。穩(wěn)定轉染Tβ10高表達的人肺巨細胞癌PG細胞系的高轉移潛能細胞亞系BEI細胞，具體轉染步驟按脂質體LipofectAMINETM2000試劑說明書進行，含400μg/ml G

4、418的RPMI1640篩選培養(yǎng)基培養(yǎng)轉染細胞。以未轉染的BE1細胞和轉染空載體pcDNA3.0的細胞(稱為BE1-EV)作為對照。 RT-PCR方法用來檢測各個細胞系中Tβ10 mRNA表達水平和BE1細胞轉染前后Tβ4 mRNA和Tβ10mRNA變化。取對數(shù)生長期用TRIZOL提取總RNA，逆轉錄成cDNA。擴增Tβ10、Tβ4，以β-actin為內參。擴增產物經1.5％瓊脂糖凝膠電泳后成像分析。 免疫熒光：觀察轉染

5、前后Tβ4、Tβ10蛋白以及F-actin變化。培養(yǎng)細胞用4％ 多聚甲醛室溫固定15min。Triton X-100處理，血清封閉后分別滴加Tβ10，Tβ4一抗，4℃孵育過夜。避光加FITC標記二抗和羅丹明-鬼筆環(huán)肽，Hoechst 33342復染細胞核后，于倒置熒光顯微鏡下觀察結果。 Western blot：收集細胞提取總蛋白。采用考馬斯亮藍法進行蛋白定量。取等量蛋白，進行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳和轉印，一抗和各自

6、對應的辣根過氧化物酶標記二抗孵育后DAB顯色，結果經自動電泳凝膠成像分析儀采集，進行灰度值測定。以β-actin為內對照，計算VEGF、VEGF-C、ERK1/2和pERK的相對表達量。 MTT法檢測細胞增殖：將單個細胞懸液接種于96孔培養(yǎng)板中，每孔含103個細胞，培養(yǎng)24h，每孔加入MTT溶液繼續(xù)培養(yǎng)4h，加入DMSO，490nm波長下測定各孔光吸收值，以不含細胞的等體積培養(yǎng)基作對照。繪制細胞生長曲線。 2、76例原發(fā)

7、性非小細胞肺癌癌組織及癌旁正常肺組織標本均來自1980年到2000年在中國遼寧省鞍山腫瘤醫(yī)院實行手術的病人，患者術前均未接受放化療。標本用中性福爾馬林溶液固定，石蠟包埋，制成4μm切片，經脫蠟，脫苯，水化后，采用鏈霉素抗生物素蛋白-過氧化物酶免疫組化法檢測組織中TD15蛋白表達情況。結果判定：以細胞質中出現(xiàn)棕黃色顆粒為陽性顯色，光鏡下每張切片在診斷確實的肺癌組織中隨機選取10個高倍視野，每個視野計數(shù)100個細胞。陽性染色細胞數(shù)≤50％為

8、Tp15低表達，>50％為Tp15高表達。 細胞爬片免疫組織化學染色：培養(yǎng)細胞制作細胞爬片，4％多聚甲醛室溫固定15min，0.2％TritonX-100處理，采用鏈霉素抗生物素蛋白．過氧化物酶免疫組化法(S-P法)觀察Tβ15蛋白表達情況。 用含10％新鮮胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)基，在37℃、5％CO2的條件下分別培養(yǎng)PG-LH7人肺巨細胞癌PG的低轉移亞系、PG-BEI人肺巨細胞癌PG的高轉移亞系。 細

9、胞轉染：pEGFP-C1-Tβ15和pEGFP-C1質粒穩(wěn)定轉染Tβ15低表達的人肺巨細胞癌PG細胞系的低轉移潛能細胞亞系LH7細胞，具體轉染步驟按脂質體LipofectAMINETM2000試劑說明書進行，含400μg/ml G418的RPMI1640篩選培養(yǎng)基培養(yǎng)轉染細胞。以未轉染的LH7細胞和轉染空載體pEGFP-C1的細胞作為對照。 RT-PCR方法用來檢測各個細胞系中Tβ15 mRNA表達水平和LH7細胞轉染前后Tβ1

10、5 mRNA變化。步驟同Tβ10實驗。 細胞遷移能力檢測：細胞遷移能力檢測用無血清RPMI1640培養(yǎng)基重懸細胞，上室中加入2.5×104個細胞，下室加入含10％小牛血清RPMI1640培養(yǎng)基。37℃、5％CO2孵箱中培養(yǎng)24h，甲醇室溫固定15min，用棉簽輕擦掉上表面的細胞，蘇木素染色。取下聚碳酸酯微孔膜，置載玻片上鏡下觀察。 3、數(shù)據分析：使用SPSS13.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據處理，以P<0.05為有統(tǒng)計學意義。

11、 實驗結果： 1、Tβ10、VEGF、VEGF-C在非小細胞肺癌中的表達及與臨床病理因素的關系：69例肺癌細胞中均有Tβ10表達，表達主要定位于癌細胞胞質，陽性細胞數(shù)從20％-90％，其中50例為高表達，低表達者為19例。而癌旁正常組織中的肺泡上皮細胞、支氣管上皮細胞為陰性表達。69例組織中VEGF、VEGF-C的陽性率為68.1％和52.2％，表達于癌細胞胞質內。Tβ10的高表達與VEGF、VEGF-C的表達呈正相關。Tβ

12、10的表達水平與肺癌的分期呈正相關，與淋巴結轉移呈正相關，與血行轉移呈正相關，與肺癌的分化程度呈負相關。 2、LH7、BEI和A549細胞均有Tβ10 mRNA和蛋白表達，但低轉移細胞系LH7中的Tβ10 mRNA表達明顯低于高轉移細胞系Bel和A549；Tβ10蛋白表達定位于細胞質內，PG-LH7細胞呈淺棕黃色，為低表達，PG-Bel細胞和A549細胞均呈深棕黃色，為高表達。Tβ10高表達肺癌細胞系Bel細胞穩(wěn)定轉染Tβ10反義

13、cDNA重組表達質粒pcDNA3.0-as-Tβ10后，經過篩選得到Tβ10表達受到明顯抑制的細胞BEI-as-Tβ10，其mRNA相對表達量與BEI細胞相比明顯減少。Tβ10表達降低的BEI-as-Tβ10細胞胞質中可見平行排列聚合的F-actim轉染了空載體的BEI細胞以及未做處理的BEE細胞胞質中看到彌漫散在的熒光信號，分布雜亂而模糊，難以見到清晰的微絲結構。BEI-as-Tβ10細胞VEGF、VEGF-C和pERK表達明顯下調。

14、 3、MTT法測定結果顯示，BEI-as-Tβ10細胞增殖能力明顯低于空質粒轉染組和空白對照組。Transwell遷移實驗顯示，轉染反義Tβ10細胞的細胞穿透數(shù)目與空質粒轉染組和空白對照組相比明顯減少，差異有統(tǒng)計學意義。在細胞侵襲實驗中Bel-as-Tβ10細胞穿透數(shù)目與空質粒轉染組和空白對照組相比明顯減少，差異有統(tǒng)計學意義。 4、76例肺癌組織中均有Tβ15表達，表達主要定位于癌細胞胞質，陽性細胞數(shù)從20％-90％，其

15、中Tβ15蛋白高表達為51例(67.1％)，低表達者為25例(32.9％)。Tβ15在癌旁正常組織中的肺泡上皮細胞、支氣管上皮細胞為陰性表達。Tβ15高表達與肺癌的分期(P=0.018)、不良分化(P=0.013)和淋巴結轉移(P=0.001)正相關。 5、LH7和BE1細胞均有Tβ15 mRNA和蛋白表達，低轉移亞系LH7中的Tβ15mRNA表達明顯低于高轉移亞系BE1(P<0.01)；Tβ15蛋白表達定位于細胞質內，低轉移亞

16、系PG-LH7細胞呈淺棕黃色，低表達；高轉移亞系PG-BE1細胞呈深棕黃色，為高表達。Tβ15低表達肺癌細胞系LH7細胞轉染pEGFP-C1-Tβ15后Tβ15mRNA含量顯著增加(P<0.01，P<0.01)。在細胞遷移實驗中pEGFP-C1-Tβ15轉染組細胞穿透數(shù)目分別為：96.33± 6.94和98 ±10.58，與空質粒轉染組(46 ±8.89)和空白對照組(37 ±8.19)相比明顯增加，差異有統(tǒng)計學意義(P=0.001，P

17、=0.044，P=0.002，P=0.016)。 結論： 1、Tβ10高表達與非小細胞肺癌的分期、淋巴結轉移、血行轉移，不良分化正相關，與VEGF、VEGF-C的表達正相關，Tβ10高表達組腫瘤中的MVD和LVD均明顯高于低表達組，VEGF、VEGF-C的表達分別與MVD和LVD呈正相關。 2、轉染反義Tβ10 cDNA重組表達質粒，有效抑制BE1肺癌細胞的Tβ10表達水平后，細胞中出現(xiàn)F-actin，細胞增殖、