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文檔簡介
1、目的:
克隆人IgGlFc段(hIgGlFc)基因,構建pET32a(+)-mGITRaa22-153-HIgGlFc原核表達載體,并在體外表達、純化mGITRaa22-153-hIgGlFc(GITR-Fc)融合蛋白;建立小鼠膠原誘導性關節(jié)炎(collagen-induced arthritis,CIA)模型,觀察GITR-Fc蛋白對CIA發(fā)病的影響,并尋找其作用機制。
方法:
(1)采用PC
2、R的方法,擴增MgGlFc基因,連接至PMD-18T載體,選擇陽性克隆進行酶切鑒定和序列測定。用酶切方法從陽性T-A克隆中獲得hIgGlFc基因,連接至pET32a(+)-mGITRaa22-153(由本實驗室保存)質粒和pET32a(+)質粒,并轉化至EcoliDH5a宿主菌,選擇陽性菌落進行增菌,抽提質粒,并進行酶切和PCR鑒定。將重組質粒pET32a(+)-mGITRaa22-153-hIgGlFc和pET32a(+)-hIgGl
3、Fc分別轉化E.ColiRosetta宿主菌,通過PCR和酶切鑒定陽性菌株,經(jīng)0.5mmol/L異丙基-β-D-硫代半乳糖苷(isopropyl β-D-1-thiogalactopyranoside,IPTG)誘導蛋白表達,表達蛋白經(jīng)Profinity IMAC Nickel柱純化、去除內毒素,并通過Western blot進行鑒定。
(2)取等體積0.2g/L雞Ⅱ型膠原(CⅡ)與弗氏完全佐劑1∶1混合,充分研磨至混合物
4、完全乳化,取乳化后的CH于小鼠(100μgCⅡ/只)尾根部皮內注射。第一次免疫當日為0天,于免疫后第21天用CⅡ與弗氏不完全佐劑的乳化物加強免疫,建立CIA模型。將模型小鼠隨機分為CIA模型組(CIA)、CIA-目的蛋白組(CIA-GITR-Fc)和CIA-對照蛋白組(CIA-Fc)。于免疫第18天時,通過尾靜脈分別注射80μg GITR-Fc蛋白及80μg對照蛋白,觀察小鼠發(fā)病進程(臨床評分,CIA發(fā)病率,病理學檢查等);利用流式細胞
5、術檢測小鼠脾臟中Tfh細胞和B細胞的比例、數(shù)目變化;利用ELISPOT檢測脾臟和骨髓中抗CⅡ特異性抗體分泌細胞的變化。
結果:
(1)成功構建pET32a(+)-mGITRaa22-153-hIgGlFc重組質粒和pET32a(+)-hIgGlFc重組質粒,經(jīng)PCR和雙酶切鑒定分別可見在1461bp和1047bp位置處出現(xiàn)條帶,并且測序結果與mGITRaa22-153基因和hIgGlFc基因序列完全一致。
6、r> (2)將陽性克隆載體轉化E.coli Rosetta宿主菌,確定終濃度1.5mmol/LIPTG,溫度25℃,誘導時間6h為最佳誘導條件,通過Profinity IMAC Nickel柱純化目的蛋白純度>90%,獲得原核表達的GITR-Fc蛋白和hIgGlFc(Fc)蛋白,相對分子質量大小分別為72KD、56KD。所得蛋白經(jīng)Western blot鑒定為GITR-Fe蛋白和Fc蛋白。
(3)成功建立小鼠CIA模
7、型,關節(jié)炎發(fā)病率為80%。在關節(jié)炎模型第45天時,GITR-Fc組小鼠的關節(jié)炎發(fā)病率(27%)明顯低于對照蛋白組(100%)和CIA組(80%);病理學檢查發(fā)現(xiàn)GITR-Fc組小鼠關節(jié)滑膜炎性細胞的浸潤及骨的侵蝕較對照蛋白組和CIA組明顯減輕。ELISPOT檢測發(fā)現(xiàn)與對照蛋白組和CIA組相比,GITR-Fc組脾臟中抗CⅡ特異性抗體分泌細胞數(shù)目明顯下降,結果有顯著差異(P<0.01);與對照蛋白組和CIA組相比,GITR-Fc組骨髓中抗C
8、Ⅱ特異性抗體分泌細胞數(shù)目明顯下降,有顯著差異(P<0.05)。流式細胞術檢測發(fā)現(xiàn),與對照蛋白組和CIA組相比,GITR-Fc蛋白組小鼠脾臟中B細胞比例(53.86±18.01%)明顯降低,有顯著差異(P<0.05);與對照蛋白組和CIA組相比,GITR-Fc蛋白處理組小鼠脾臟中Tfh細胞比例(1.39±0.84%)明顯減少,有顯著差異(P<0.05);同時根據(jù)計算發(fā)現(xiàn),GITR-Fc蛋白組小鼠脾臟中Tfh細胞數(shù)目(2.20×105±1.
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