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文檔簡介
1、目的:研究荔枝核總黃酮(TotalFlavonoids ofLitchiChinensisSonn, TFL)對轉化生長因子-β1(Transforming Growth Factor beta-1,TGF-β1)誘導的大鼠肝星狀細胞T6(Hepatic Stellate Cell-T6,HSC-T6)細胞增殖及對細胞內核轉錄因子-κB(Nuclear Factor-kappa B,NF-κB)及α-平滑肌肌動蛋白(α-Smooth M
2、uscle Actin,α-SMA)表達的影響。
方法:用含10%FBS的DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng)大鼠肝星狀細胞T6,當細胞處于生長對數(shù)期,0.25%胰蛋白酶消化收集細胞后,除正常組用含10%FBS的DMEM培養(yǎng)液外,其余組均用含10%FBS的DMEM+5μg/L TGF-β1培養(yǎng)液吹打均勻,配成單細胞懸液,行細胞計數(shù)。(1)MTT法檢測細胞增殖活力。將細胞接種于96孔培養(yǎng)板中,培養(yǎng)12h后,按以下分組處理細胞,即TGF-β1組(含
3、5μg/L TGF-β1,下同),對照組(含5‰DMSO,下同),TFL80、160、320、640、800組(即80、160、320、640、800 mg/L TFL),每組設5個復孔。分別于加藥24、48、72 h后,按MTT法實驗步驟準備細胞,采用酶標儀分別測定490 nm處各孔吸光度(A)值并分別計算細胞抑制率及半數(shù)抑制質量濃度(IC50),以確定后續(xù)實驗的藥物濃度組及藥物作用時間。(2) Hoechst33258熒光染色觀察細
4、胞凋亡形態(tài)學變化。(3)采用半定量PCR法檢測HSC-T6細胞中α-SMA、NF-κBmRNA的表達。將細胞接種于10 cm培養(yǎng)皿中,培養(yǎng)12h后,根據MTT法實驗結果,重新分組處理細胞,即TGF-β1組,對照組,TFL125、250、500組(即125、250、500 mg/L TFL組)。分組培養(yǎng)48 h后,收集各組細胞,分別提取各組細胞總RNA。用半定量PCR法檢測各組細胞中NF-κB、α-SMA mRNA的表達。(4)Weste
5、rn blot檢測HSC-T6細胞中NF-κB及α-SMA蛋白的表達。將細胞接種于10 cm培養(yǎng)皿中,培養(yǎng)12h后,按步驟(2)分組處理細胞。分組培養(yǎng)48 h后,收集各組細胞,分別提取各組細胞總蛋白。用Western blot法檢測各組細胞中NF-κB、α-SMA蛋白的表達。
結果:(1)MTT檢測結果顯示,在同一作用時間點,隨著TFL濃度的增高,HSC-T6細胞的A值逐漸降低,相反細胞抑制率則逐漸上升。(2)熒光顯微鏡下觀察
6、顯示:對照組細胞胞核完整, TFL250組細胞見凋亡細胞核及核碎片。(3)半定量PCR法檢測結果顯示, TGF-β1組HSC-T6細胞NF-κB mRNA(0.55±0.04)、α-SMA mRNA(0.36±0.05)表達量與對照組HSC-T6細胞NF-κB mRNA(0.58±0.06)、α-SMA mRNA(0.41±0.03)表達量差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);TFL125組HSC-T6細胞NF-κB mRNA(0.53±0
7、.03)、α-SMA mRNA(0.35±0.06)表達量與TGF-β1組、對照組差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05);TFL250組HSC-T6細胞NF-κB mRNA(0.23±0.01)、α-SMA mRNA(0.22±0.02)表達量及TFL500組HSC-T6細胞NF-κB mRNA(0.14±0.01)、α-SMA mRNA(0.18±0.02)表達量均分別與對照組的NF-κB mRNA、α-SMA mRNA有統(tǒng)計學差異(P<
8、0.05)。(4)Western blot法檢測各組細胞中蛋白分析顯示, TFL250組HSC-T6細胞NF-κB蛋白(0.28±0.07)、α-SMA蛋白(0.38±0.01)表達量及TFL500組HSC-T6細胞NF-κB蛋白(0.19±0.01)、α-SMA蛋白(0.33±0.13)表達量均分別與對照組的NF-κB蛋白(0.46±0.06)、α-SMA蛋白(0.64±0.13)有統(tǒng)計學差異(P<0.05)。
結論:TFL
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