2023年全國(guó)碩士研究生考試考研英語(yǔ)一試題真題(含答案詳解+作文范文)_第1頁(yè)
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文檔簡(jiǎn)介

1、睪丸Leydig干細(xì)胞分離、純化及鑒定的體外研究
   研究背景
   Leydig細(xì)胞(LCs)是男性體內(nèi)睪酮的主要來(lái)源,Leydig細(xì)胞發(fā)育異常,功能不全或數(shù)量異常,在青春期將影響男性第二性征的形成,在性成熟期會(huì)出現(xiàn)雄激素缺乏性疾病,導(dǎo)致機(jī)體出現(xiàn)成分改變,肌肉力量和軀體功能下降,性功能、生殖功能降低,情緒低落以及認(rèn)知能力的減退[1]。引起該類(lèi)疾病的病因也趨向多樣化,如因創(chuàng)傷、腫瘤等造成的睪丸缺失,先天性疾病,環(huán)境污染

2、,工作壓力日益加劇和人口老齡化等原因,使得近年來(lái)雄激素缺乏性疾病的發(fā)病率具有逐年上升的趨勢(shì)[2, 3]。針對(duì)這類(lèi)疾病,目前尚無(wú)滿意的治療措施,最常用的治療方法是補(bǔ)充外源性雄激素,但其臨床應(yīng)用較為困難,補(bǔ)充的量及時(shí)間難以掌握,無(wú)法符合機(jī)體的生物節(jié)律,且長(zhǎng)期應(yīng)用后存在較多的并發(fā)癥[1,4]。
   隨著組織工程技術(shù)的不斷進(jìn)步,以組織工程技術(shù)構(gòu)建雄激素分泌組織,有望成為一種理想的治療手段[5-7]。本課題組前期研究證實(shí)了Leydig細(xì)

3、胞構(gòu)建雄性激素分泌組織的可行性,但研究發(fā)現(xiàn)成熟LCs不能增殖,存活時(shí)間短,構(gòu)建組織無(wú)法長(zhǎng)期維持功能[8, 9]。同其它功能分化細(xì)胞一樣,睪丸Leydig細(xì)胞也來(lái)源于原始未分化的Leydig干細(xì)胞,睪丸內(nèi)Leydig細(xì)胞通過(guò)Leydig干細(xì)胞(Leydig Stem Cells,SLCs)的增殖、分化維持群體數(shù)目的動(dòng)態(tài)穩(wěn)定[10, 11]。由于Leydig干細(xì)胞具有雄性激素分泌潛能和自我更新能力,而且有可能在植入后受到機(jī)體先天調(diào)控機(jī)制的影

4、響,從而更符合生理要求,因此成為最有前景的雄激素分泌組織構(gòu)建的種子細(xì)胞。長(zhǎng)期以來(lái)SLCs由于缺乏特異性的標(biāo)志物而阻礙了其分離及純化。此外,由于睪丸內(nèi)細(xì)胞成分較多,且存在復(fù)雜的細(xì)胞通信,研究證實(shí)通過(guò)各種方法所獲得的含SLCs的Leydig細(xì)胞群,其中的干細(xì)胞很快就發(fā)生分化,難以維持干性,因而無(wú)法獲得大量SLCs。近年來(lái),SLCs得到確認(rèn)及鑒定并有分離純化的報(bào)道[12],但由于采用傳統(tǒng)的Percoll分離法及免疫粘附法,SLCs的流失量及損

5、傷較大,難以滿足做為組織工程種子細(xì)胞的需求,此外SLCs在體外的培養(yǎng)特性,培養(yǎng)方法,增殖能力,干性維持能力及睪酮分泌能力均缺乏詳細(xì)的研究。研究目的
   本研究擬通過(guò)膠原酶消化、差速貼壁法及雙抗體免疫磁珠分選法,改進(jìn)Leydig干細(xì)胞的分離及純化方法。由7天大鼠睪丸內(nèi)獲取純化的Leydig干細(xì)胞,進(jìn)一步研究在體外條件下SLCs的培養(yǎng)特性,包括在條件培養(yǎng)液中的增殖能力及干性維持能力。通過(guò)對(duì)表面標(biāo)志物及產(chǎn)生睪酮關(guān)鍵酶的測(cè)定,并經(jīng)定向

6、誘導(dǎo)分Leydig細(xì)胞系鑒定Leydig干細(xì)胞,同時(shí)檢測(cè)分化后Leydig細(xì)胞的睪酮分泌能力,從而初步解決組織工程化雄激素分泌組織研究中種子細(xì)胞的問(wèn)題。
   研究方法
   一.
   差速貼壁法分離大鼠Leydig細(xì)胞群:獲取生后7天齡雄性Wistar大鼠雙側(cè)睪丸,4℃無(wú)菌條件下去除白膜及較大的血管,用膠原酶震蕩消化和400目(Ф33μm)不銹鋼濾網(wǎng)過(guò)濾,離心后貼壁培養(yǎng)2小時(shí),然后棄上清并漂洗1次,獲得Ley

7、dig細(xì)胞群。
   二
   . 雙抗體免疫磁珠分選法獲取純化的SLCs:將貼壁分離法獲得的細(xì)胞計(jì)數(shù)、離心,然后重新懸浮,4℃條件下加入LHR抗體孵育30分鐘后,離心去除上清后懸浮細(xì)胞,加入免疫磁珠放置15分鐘,上機(jī)經(jīng)自動(dòng)磁性活化細(xì)胞分選(MACS)獲取陰選細(xì)胞。所獲得的陰選細(xì)胞重復(fù)上述步驟,加入PDGFRα抗體和免疫磁珠分別孵育30分鐘及15分鐘,再次經(jīng)MACS獲取陽(yáng)選細(xì)胞,由此得到純化的PDGFRα(+)/LHR(

8、-)細(xì)胞。
   三.
   條件培養(yǎng)體系對(duì)SLCs增殖及干性維持作用:純化的細(xì)胞獲取后以條件培養(yǎng)體系進(jìn)行培養(yǎng),觀察細(xì)胞形態(tài)改變及培養(yǎng)特性,采用CCK(Cell Counting Kit)法測(cè)定其增殖能力并繪制增殖曲線。對(duì)培養(yǎng)一個(gè)月后的細(xì)胞進(jìn)行3β-HSD免疫組織化學(xué)染色及流式細(xì)胞分析,觀察其干性維持能力。
   四.
   SLCs表面標(biāo)志物及酶的檢測(cè):對(duì)Lyedig細(xì)胞系細(xì)胞標(biāo)志物PDGFRα,干細(xì)胞

9、標(biāo)志物L(fēng)IFR, Leydig細(xì)胞分化的特異性酶3β-HSD進(jìn)行免疫組織化學(xué)染色及流式細(xì)胞分析以鑒定SLCs。
   五
   . SLCs的誘導(dǎo)分化及睪酮分泌潛能的檢測(cè):將SLCs分兩組按照1.0×105/ well密度接種于24孔板上,其中一組在條件培養(yǎng)液中加入T3, HCG對(duì)SLCs進(jìn)行誘導(dǎo)分化,隔日收集誘導(dǎo)分化組和未誘導(dǎo)組培養(yǎng)液上清,經(jīng) Access 全自動(dòng)免疫分析系統(tǒng)(RIA,放射免疫測(cè)定)測(cè)定睪酮水平,觀察其

10、分化能力及睪酮分泌潛能。
   研究結(jié)果研究目的
   本研究擬通過(guò)膠原酶消化、差速貼壁法及雙抗體免疫磁珠分選法,改進(jìn)Leydig干細(xì)胞的分離及純化方法。由7天大鼠睪丸內(nèi)獲取純化的Leydig干細(xì)胞,進(jìn)一步研究在體外條件下SLCs的培養(yǎng)特性,包括在條件培養(yǎng)液中的增殖能力及干性維持能力。通過(guò)對(duì)表面標(biāo)志物及產(chǎn)生睪酮關(guān)鍵酶的測(cè)定,并經(jīng)定向誘導(dǎo)分Leydig細(xì)胞系鑒定Leydig干細(xì)胞,同時(shí)檢測(cè)分化后Leydig細(xì)胞的睪酮分泌能

11、力,從而初步解決組織工程化雄激素分泌組織研究中種子細(xì)胞的問(wèn)題。
   研究方法
   一.
   差速貼壁法分離大鼠Leydig細(xì)胞群:獲取生后7天齡雄性Wistar大鼠雙側(cè)睪丸,4℃無(wú)菌條件下去除白膜及較大的血管,用膠原酶震蕩消化和400目(Ф33μm)不銹鋼濾網(wǎng)過(guò)濾,離心后貼壁培養(yǎng)2小時(shí),然后棄上清并漂洗1次,獲得Leydig細(xì)胞群。
   二
   . 雙抗體免疫磁珠分選法獲取純化的SLCs

12、:將貼壁分離法獲得的細(xì)胞計(jì)數(shù)、離心,然后重新懸浮,4℃條件下加入LHR抗體孵育30分鐘后,離心去除上清后懸浮細(xì)胞,加入免疫磁珠放置15分鐘,上機(jī)經(jīng)自動(dòng)磁性活化細(xì)胞分選(MACS)獲取陰選細(xì)胞。所獲得的陰選細(xì)胞重復(fù)上述步驟,加入PDGFRα抗體和免疫磁珠分別孵育30分鐘及15分鐘,再次經(jīng)MACS獲取陽(yáng)選細(xì)胞,由此得到純化的PDGFRα(+)/LHR(-)細(xì)胞。
   三.
   條件培養(yǎng)體系對(duì)SLCs增殖及干性維持作用:純

13、化的細(xì)胞獲取后以條件培養(yǎng)體系進(jìn)行培養(yǎng),觀察細(xì)胞形態(tài)改變及培養(yǎng)特性,采用CCK(Cell Counting Kit)法測(cè)定其增殖能力并繪制增殖曲線。對(duì)培養(yǎng)一個(gè)月后的細(xì)胞進(jìn)行3β-HSD免疫組織化學(xué)染色及流式細(xì)胞分析,觀察其干性維持能力。
   四.
   SLCs表面標(biāo)志物及酶的檢測(cè):對(duì)Lyedig細(xì)胞系細(xì)胞標(biāo)志物PDGFRα,干細(xì)胞標(biāo)志物L(fēng)IFR, Leydig細(xì)胞分化的特異性酶3β-HSD進(jìn)行免疫組織化學(xué)染色及流式細(xì)胞

14、分析以鑒定SLCs。
   五
   . SLCs的誘導(dǎo)分化及睪酮分泌潛能的檢測(cè):將SLCs分兩組按照1.0×105/ well密度接種于24孔板上,其中一組在條件培養(yǎng)液中加入T3, HCG對(duì)SLCs進(jìn)行誘導(dǎo)分化,隔日收集誘導(dǎo)分化組和未誘導(dǎo)組培養(yǎng)液上清,經(jīng) Access 全自動(dòng)免疫分析系統(tǒng)(RIA,放射免疫測(cè)定)測(cè)定睪酮水平,觀察其分化能力及睪酮分泌潛能。
   研究結(jié)論
   本研究證實(shí)由差速貼壁法及雙

15、抗體免疫磁珠分選法能獲得純化的PDGFRα(+)/LHR(-)陰性細(xì)胞,該細(xì)胞能夠在條件培養(yǎng)液中增殖,并在體外培養(yǎng)一個(gè)月后維持未分化狀態(tài),此外,經(jīng)各種標(biāo)志物檢測(cè)證實(shí)Leydig細(xì)胞標(biāo)志物PDGFRα(+),干細(xì)胞標(biāo)志物L(fēng)IFR(+),Leydig細(xì)胞分化的特異性酶3β-HSD為陰性,經(jīng)誘導(dǎo)分化后細(xì)胞具有睪酮分泌能力并表現(xiàn)為3β-HSD(+)。由此證實(shí)細(xì)胞符合SLCs所必需具有的特征:1、在體外能自我更新 2、能維持未分化狀態(tài) 3、具有向

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