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文檔簡介
1、一、研究背景:
膿毒癥(sepsis)是感染、休克、嚴重創(chuàng)傷和外科大手術患者常見的并發(fā)癥,可進一步發(fā)展為膿毒性休克、多器官功能障礙綜合征(multiple organ dysfunction syndrome,MODS)等,甚至死亡,是危重病患者的最主要死亡原因之一。膿毒癥的本質是感染所引起的失控的全身性炎癥反應綜合征(systemic inflammatory responsesyndrome,SIRS),通過各種炎癥介質過
2、度釋放,引起廣泛的自身細胞和組織損傷以及多器官功能障礙。近年來學術界對SIRS的機制已獲得共識:SIRS是機體非特異性免疫系統(tǒng)(特別是單核-巨噬細胞)對細菌內毒素及其致炎物質的過度反應。
Tec(Tyrosine kinase expressed in hepatocelluar carcinoma)是1990年Mano等在研究肝癌時,在肝癌組織中篩選得到的、起重要作用的一種酪氨酸蛋白激酶基因。其是一種重要的非受體型蛋白酪氨酸
3、激酶,存在于胞質內,主要在肝臟、T細胞、B細胞、造血細胞等中表達,主要與GM-CSF、EPO、EGF、IL-6等細胞因子介導的信號轉導途徑密切相關,參與對血細胞尤其是B淋巴細胞和T淋巴細胞的增殖與分化,并在肝細胞增殖中發(fā)揮著重要的調控作用。近幾年國內外很多研究發(fā)現(xiàn),它也參與一些類風濕性關節(jié)炎等慢性炎癥相關性疾病的炎癥反應過程。綜上,Tec家族激酶可能與炎癥過程有著密切的關系,且有一些重要問題未被闡明。
本實驗采用RAW264.
4、7單核巨噬細胞為研究對象,觀察膿毒癥時巨噬細胞TEC的表達及活化規(guī)律,并使用TEC激酶特異性抑制劑LFM-A13進行干預,觀察TEC激酶在巨噬細胞促炎性細胞因子TNF-α和IL-1β產生中的作用,以了解TEC激酶在膿毒癥時巨噬細胞炎癥介質產生中的作用和機制,以進一步了解膿毒癥的發(fā)生機制并為其防治提供新的思路和方法。
二、研究目的:
1.探討LPS對RAW264.7巨噬細胞TEC激酶表達及TEC激酶磷酸化水平的影響。<
5、br> 2.研究TEC激酶在RAW264.7巨噬細胞促炎性細胞因子TNF-a和IL-1β產生中的作用。
三、研究內容
第一部分LPS對RAW264.7巨噬細胞TEC激酶表達的影響
小鼠RAW264.7單核巨噬細胞常規(guī)培養(yǎng)后分劑量效應和時間效應兩方面進行研究。(l)劑量效應研究:加入不同濃度的lps(0.01,0.1,1,10,100ug/ml)刺激24h。(2)時間效應研究:加入0.1ug/ml的lps分
6、別刺激0,15min,30min,45min,60min和120min;采用Western Blot法聯(lián)合免疫沉淀法檢測細胞TEC激酶的表達和TEC激酶磷酸化水平。
第二部分TEC激酶在LPS誘導巨噬細胞促炎性細胞因子產生中的作用
按照隨機數(shù)字表法將培養(yǎng)于6孔板的RAW264.7巨噬細胞分為4組,每組8孔細胞。包括:
?。?)空白對照組::采用含體積分數(shù)10%FBS的DMEM培養(yǎng)液常規(guī)培養(yǎng)2 h;
7、(2)LFM-A13組:預先用75μmol/L的TEC激酶特異性抑制劑LFM-A13預處理細胞1 h,再常規(guī)培養(yǎng)1 h;
(3)LPS組:采用含體積分數(shù)10%FBS的DMEM培養(yǎng)液常規(guī)培養(yǎng)1 h,再用0.1μg/mL LPS刺激1 h;
(4)LPS+LFM-A13組:預先用75μmol/L的LFM-A13處理細胞1 h,再用0.1μg/ml LPS刺激1 h。采用ELISA法測定各組培養(yǎng)上清液中TNF-α和IL-1
8、β的含量;實時熒光定量PCR檢測細胞內TNF-α和IL-1βmRNA的表達;蛋白印跡法檢測細胞內TEC激酶、轉化生長因子激活激酶(TAK1)和p38 MAPK的活性。
四、研究結果:
第一部分
Western Blot結果顯示:
(1)LPS誘導RAW264.7單核巨噬細胞TEC激酶的表達表達呈劑量依賴性,在一定范圍內(<1ug/ml),隨LPS濃度的增加,巨噬細胞TEC激酶的表達逐漸增強,LPS
9、為1ug/ml孵育24h時誘導TEC激酶表達達到高峰,但高濃度(>1ug/ml)時LPS的刺激效應逐漸降低。
?。?)LPS(O.1ug/ml)誘導RAW264.7單核巨噬細胞TEC激酶磷酸化水平呈時間依賴性,孵育15min后,巨噬細胞TEC激酶磷酸化水平開始上升,在60min達到最高峰,隨后下降。
第二部分
ELISA、Real-time PCR和Western Blot結果顯示:LFM-A13組培養(yǎng)上清液
10、中的TNF-α、IL-1β含量分別為329±41、220±27,與空白對照組的330±44、211±31接近(P值均大于0.05);其TNF-α、IL-1βmRNA含量分別為0.92±0.13、0.98±0.13,與空白對照組的1.00±0.18、1.00±0.19接近(P值均大于0.05)。LPS組細胞培養(yǎng)上清液中的TNF-α、IL-1β含量分別為(1213±154)、(636±90)pg/mL,均顯著高于空白對照組(P值均小于0.0
11、1);其細胞內的TNF-α和IL-1β mRNA表達分別為1.57±0.22、1.44±0.24,均顯著高于空白對照組(P值均小于0.01)。LPS+LFM-A13組上清液中的TNF-α、IL-1β含量分別為(787±109)、(453±64)pg/mL,顯著低于LPS組(P值均小于0.05);其細胞內TNF-α和IL-1βmRNA表達分別為1.21±0.15、1.21±0.22,也顯著低于LPS組(P值均小于0.05)。LPS組細胞內
12、TEC、TAK1和p38 MAPK活性表達分別為2.69±0.41、3.99±0.65、2.07±0.31,均明顯高于空白對照組的1.00±0.17、1.00±0.16、1.00±0.18(P值均小于0.01);LPS+LFM-A13組細胞內TEC、TAK1和p38 MAPK活性表達(分別為1.02±0.17、1.18±0.20、1.58±0.28)亦較LPS組顯著下降(P<0.05或P<0.01)。
五、研究結論:
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