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文檔簡介
1、目的:HBV感染過程是病毒與宿主因子發(fā)生相互作用、相互影響的過程。在抵御病毒感染方面,一些細胞內(nèi)宿主因子具有抗病毒效應,從而對宿主免疫系統(tǒng)有補充作用。DExD/H-box家族蛋白是RNA解旋酶家族中重要亞家族。有研究報道該家族中一些成員可參與抵抗病毒感染。然而關于DExD/H-box家族蛋白在HBV復制調(diào)控中作用的報道非常有限。本研究篩選了可抑制HBV復制的DExD/H-box家族成員,并對其中的DDX17在HBV復制調(diào)控中的作用及分子
2、機制進行了研究。
方法:
1.通過NCBI/BLAST數(shù)據(jù)庫查詢目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)的所有DExD/H-box解旋酶家族蛋白種類;
2.以HepG2細胞來源cDNA為模板,利用RT-PCR方法,分別擴增DExD/H-box家族基因家族基因,并將目的基因片段連接至載體pCH9;
3.構建HBV核心啟動子熒光素酶報告基因pCH9-pcore-Rluc;
4.在HepG2細胞中,分別共轉(zhuǎn)染各種目的基因
3、表達質(zhì)粒與pCH9-pcore-Rluc或空載體與pCH9-pcore-Rluc,轉(zhuǎn)染48h后收集細胞進行熒光素酶報告檢測;
5.使用Western blot檢測方法鑒定DDX17在HepG2細胞中過表達水平;
6.使用Southern blot檢測方法鑒定過表達DDX17對HepG2細胞中HBV復制中間體表達水平的影響;
7.使用Western blot檢測方法鑒定DDX17在Huh7細胞中過表達水平;<
4、br> 8.使用Southern blot檢測方法鑒定過表達DDX17對Huh7細胞中HBV復制中間體表達水平的影響;
9.使用Northern blot檢測方法鑒定過表達DDX17對HepG2細胞中HBV轉(zhuǎn)錄水平的影響;
10.使用Northern blot檢測方法鑒定過表達DDX17對Huh7細胞中HBV轉(zhuǎn)錄水平的影響;
11.通過ELISA方法檢測過表達DDX17對肝癌細胞HepG2上清中HBeAg
5、分泌量的影響;
12.通過ELISA方法檢測過表達DDX17對肝癌細胞Huh7上清中HBeAg分泌量的影響;
13.通過ELISA方法檢測過表達DDX17對肝癌細胞HepG2上清中HBsAg分泌量的影響;
14.通過ELISA方法檢測過表達DDX17對肝癌細胞Huh7上清中HBsAg分泌量的影響;
15.通過RT-PCR方法檢測DDX17對ER-α、ZAP或IFN信號途徑中節(jié)點分子表達水平的影響;
6、
16.構建DDX17基序Ic和基序II突變體A1004T+C1007G、A1077C+A1086C;
17.將質(zhì)粒DDX17TPGRM、DDX17DEADM、wtDDX17或DDX17空載與HBV1.3共轉(zhuǎn)染HepG2細胞,裂解細胞并進行Southern blot檢測和Northern blot檢測;
18.體外轉(zhuǎn)錄HBVε莖環(huán)結構,并與過表達DDX17的細胞蛋白裂解液進行共孵育,進行RNA-Protei
7、n Pull-Down實驗;
19.利用CRISPR/Cas9系統(tǒng)構建DDX17基因敲除HepG2細胞系,使用測序及Western blot方法鑒定DDX17表達是否缺失;
20.在DDX17KO細胞中過表達外源DDX17表達質(zhì)粒,利用Western blot檢測DDX17蛋白表達水平;
21.在DDX17KO細胞中共表達DDX17空載體質(zhì)粒與HBV1.3,做Real-time PCR檢測分析和Southe
8、rn blot檢測;
22.在DDX17KO和HepG2細胞中分別共轉(zhuǎn)染pCH9-pcore-Rluc和CMV-Fluc,做雙熒光素酶報告系統(tǒng)分析;
23.在HepG2-DDX17KO細胞中,分別共轉(zhuǎn)染DDX17、pCH9-pcore-Rluc與CMV-Fluc或者vector、pCH9-pcore-Rluc與CMV-Fluc做雙熒光素酶報告檢測分析;
24.構建HBV核心啟動子截短突變體;
25
9、.在HepG2細胞中分別共轉(zhuǎn)上述突變體與CMV-Fluc,做雙熒光素酶報告系統(tǒng)分析;
26.在DDX17KO和HepG2細胞中分別共表達pCH9-BCP-Rluc和CMV-Fluc做雙熒光素酶報告系統(tǒng)分析;
27.在DDX17KO和HepG2細胞中分別共表達pCH9-1636-Rluc和CMV-Fluc、pCH9-1635/1744-Rluc和Fluc做雙熒光素酶報告系統(tǒng)分析。
結果:
1.目前已
10、經(jīng)發(fā)現(xiàn)的人源性DExD/H-box RNA解旋酶有58個,包括16個DHX(DEAH/DExH家族)和42個DDX(DEAD/DExD家族);
2.成功構建27種DExD/H-box RNA解旋酶基因真核細胞表達質(zhì)粒;
3.成功構建HBV核心啟動子熒光素酶報告質(zhì)粒pCH9-pcore-Rluc;
4.與對照組相比,DDX17可以顯著負向調(diào)控HBV啟動子活性(P<0.0001);
5.與對照組相比,
11、在HepG2細胞中轉(zhuǎn)染DDX17表達質(zhì)粒后DDX17蛋白表達水平明顯升高;
6.與對照組相比,在HepG2細胞中過表達DDX17后HBV復制中間體表達水平明顯下降;
7.與對照組相比,在Huh7細胞中轉(zhuǎn)染DDX17表達質(zhì)粒后DDX17蛋白表達水平明顯升高;
8.與對照組相比,在Huh7細胞中過表達DDX17后HBV復制中間體表達水平明顯下降;
9.與對照組相比,在HepG2細胞中過表達DDX17后
12、HBV3.5/3.4kb RNA和2.4/2.1kb RNA表達水平均明顯下降;
10.與對照組相比,在Huh7細胞中過表達DDX17后HBV3.5/3.4kb RNA和2.4/2.1kb RNA表達水平均明顯下降;
11.在HepG2細胞中,與對照組相比,過表達DDX17后HBeAg分泌量顯著低于對照組(P=0.0032);
12.在Huh7細胞中,與對照組相比,過表達DDX17后HBeAg分泌量顯著低于
13、對照組(P<0.0001);
13.在HepG2細胞中,與對照組相比,過表達DDX17后HBsAg分泌量顯著低于對照組(P=0.0004);
14.在Huh7細胞中,與對照組相比,過表達DDX17后HBsAg分泌量顯著低于對照組(P=0.0035);
15.未發(fā)現(xiàn)過表達DDX17后與對照組中ER-α、ZAP或IFN信號途徑中節(jié)點分子mRNA表達水平有顯著差異;
16.成功構建DDX17基序Ic和基
14、序II突變體TPGRM和DEADM;
17.突變TPGR結構域后,HBV DNA及HBV RNA水平明顯高于DDX17野生型對照組、而接近空載體對照組;而突變DEAD結構域則未發(fā)現(xiàn)HBV DNA及HBV RNA與DDX17野生型對照組有明顯差異;
18.HBV?莖環(huán)并不能直接與DDX17發(fā)生結合;
19.成功構建4個HepG2-DDX17KO細胞系;
20.DDX17KO細胞本身并不表達DDX17
15、蛋白,外源DDX17表達質(zhì)粒c-Myc-DDX17可以在DDX17KO細胞中正常表達;
21.Real-time PCR結果發(fā)現(xiàn)DDX17KO細胞中共轉(zhuǎn)染空載體質(zhì)粒與HBV1.3后檢測到的HBV復制中間體表達水皮顯著高于對照細胞系HepG2(P=0.0101),Southern blot結果同樣發(fā)現(xiàn)DDX17KO細胞中共轉(zhuǎn)染空載體質(zhì)粒與HBV1.3檢測到的HBV復制中間體表達水平明顯高于對照細胞系HepG2;
22.
16、與對照細胞系HepG2相比,DDX17KO細胞中Rluc活性顯著升高(P<0.0001);
23.與對照組相比,DDX17KO細胞中補充外源DDX17后Rluc活性顯著下降(P=0.0004);
24.成功構建HBV核心啟動子截短突變體;
25. DDX17可抑制pCH9-pcore-Rluc啟動子活性,而對截短體,無論是同時缺失Enh I和Enh II,或者缺失Enh I,均表現(xiàn)為正向調(diào)控作用;Enh I
17、的貢獻率超過85%,而Enh II僅達8.5%;并且與對照組相比,過表達DDX17后Enh I貢獻率下降11%,過表達DDX17后Enh II及BCP貢獻率均有小幅度升高;
26.與對照細胞系相比,DDX17KO細胞BCP啟動子活性并無顯著差異;
27.與對照細胞系相比,DDX17KO細胞中pCH9-1636-Rluc啟動子活性顯著降低(P=0.0256),pCH9-1635/1744-Rluc啟動子活性顯著升高(P
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