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文檔簡介
1、目的:由于缺乏有效的分離方法,目前對于髓系來源的免疫抑制細胞(Myeloid derived suppressor cells, MDSCs)的研究均停留在混合細胞水平。本實驗旨在利用Gfi1:GFP基因敲入小鼠感染性休克模型,采用流式細胞分選技術分離骨髓單核系和粒系來源的MDSCs,并對其表型和體外免疫抑制功能加以鑒定。
方法:1)感染性休克小鼠模型的構建:利用LPS連續(xù)腹腔注射方法構建Gfi1:GFP基因敲入小鼠感染性休克
2、模型,分別于注射后第4天、第7天檢測模型小鼠血漿細胞因子分泌情況,以鑒定造模是否成功;2)骨髓單核系、粒系來源的MDSCs的分離:采用流式細胞分選技術,分離感染性休克小鼠模型骨髓中單核來源的MDSCs(CD11b+Gr1med GFP-)和粒系來源的MDSCs(CD11b+Gr1med GFP+)兩群細胞,并進行形態(tài)學鑒定;3)表型和功能鑒定:動態(tài)觀察單核來源的MDSCs(CD11b+Gr1med GFP-)和粒系來源的MDSCs(CD
3、11b+Gr1med GFP+)兩群細胞在模型小鼠骨髓細胞中的比例變化和表型差異,并利用體外共培養(yǎng)技術,將分離純化的單核系和粒系來源的MDSCs亞群分別與CFSE標記的活化CD4+T細胞共培養(yǎng),體外檢測二者對CD4+T細胞增殖的抑制功能,同時采用real-time PCR方法檢測二者促炎因子IFN-γ和抑炎因子IL-4、IL-10、IL-13、TGF-β等細胞因子的表達情況,以及發(fā)揮免疫抑制作用所需的精氨酸酶(ArginaseⅠ,Arg
4、Ⅰ)和一氧化氮合酶2(nitric oxide synthetase2, NOS2)的表達水平。
結果:1)與正常對照小鼠相比,感染急性期(LPS腹腔注射24小時)模型小鼠外周血各種促炎、抑炎以及趨化因子均明顯增高;與急性感染模型小鼠相比,感染性休克小鼠模型(LPS連續(xù)腹腔注射7天)外周血血漿中各種促炎因子 TNF-α、IL-6、IFN-γ、趨化因子MCP-1水平明顯降低,而抑炎因子IL-10的水平略有下降,但仍明顯高于正常對
5、照小鼠;2)利用Gfi1:GFP轉基因小鼠,根據Gfi1基因在單核系、粒系來源的MDSCs中的差異表達,可分選出純度大于99%的骨髓單核系來源的MDSCs(其表型為CD11b+Gr1med GFP-)和粒系來源的MDSCs(其表型為CD11b+Gr1med GFP+),經Wright-Giemsa染色形態(tài)學鑒定, CD11b+Gr1med GFP+細胞主要為以中晚幼粒細胞為主的幼稚粒細胞;而CD11b+Gr1med GFP-細胞主要是幼
6、稚單核細胞;3)感染性休克模型小鼠骨髓中CD11b+的髓系細胞較正常小鼠明顯增多,在這些增多的髓系細胞中,尤以粒系來源的MDSCs為主。與正常小鼠相比, LPS連續(xù)腹腔注射4天模型小鼠骨髓粒系來源的MDSCs細胞膜表面CD124(IL-4受體)、CD210(IL-10受體)、以及Toll樣受體TLR-2和TLR-4的表達有所增加,CD62L表達有所下降,而CD80和CD86的表達則無明顯差別;單核系來源的MDSCs細胞表面TLR-2表達
7、減弱, CD124、CD210以及TLR-4表達增強,其他分子表達無顯著差異; LPS連續(xù)腹腔注射7天模型小鼠骨髓粒系來源的MDSCs細胞膜表面CD124、CD210和TLR-2的表達有所增加,而CD80和CD86的表達無顯著差異;單核系來源的MDSCs細胞表面TLR-2表達減弱,其他表型無明顯差別;CD11b+Gr1med GFP+與CD11b+Gr1med GFPˉ細胞均能不同程度地影響經CD3/28刺激活化的CD4+T淋巴細胞增殖
8、,且該抑制作用隨共培養(yǎng)體系中MDSCs比例的增加而呈現遞增現象。粒系和單核系來源的骨髓MDSCs細胞均能降低CD4+T細胞的增殖活性,且尤以粒系來源的MDSCs的增殖抑制作用顯著;粒系來源的MDSCs(CD11b+Gr1med GFP+)和單核系來源的MDSCs(CD11b+Gr1med GFP-)細胞亞群的IL-4、IL-10、IL-13、IFN-γ等細胞因子以及ArgⅠ、NOS2等酶的RNA水平表達均增強,說明兩個細胞亞群均可通過分
9、泌各種抑制性細胞因子以及這兩種酶參與感染性休克免疫抑制。
結論:
1.利用LPS腹腔連續(xù)給藥的方法,成功建立了感染性休克小鼠模型;
2.利用Gfi1:GFP基因敲入小鼠,采用流式細胞分選技術,可以獲得高純度單核系和粒系來源的骨髓MDSCs;
3.感染性休克小鼠模型中,骨髓 MDSCs顯著增高,且以粒系來源的MDSCs為主;
4.感染性休克模型小鼠骨髓粒系來源的MDSCs(CD11b+Gr
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