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文檔簡介
1、目的:首先通過優(yōu)化外周血單個核細胞(Peripheral blood mononuclear cells,PB-MCs)的獲取方法,提高樹突狀細胞(DenDendritic cells DCs)的前體細胞CD14+細胞產(chǎn)出率,并對體外誘導DCS的方法進行改進,獲得高純度的DCs。然后對腫瘤組織進行純化培養(yǎng),獲得純化的腫瘤細胞并制備成純化的、個體化的凍融抗原。并與腫瘤壞死因子(TNF-α)共同致敏未成熟DCS,制備高純度、個體化DCs疫苗
2、。方法:1.無菌條件下常規(guī)采集外周血,肝素抗凝,采用Ficoll密度梯度離心法分離外周血單個核細胞。在相同的離心時間,根據(jù)不同的離心力分A、B、C三組,流式細胞儀檢測獲得的PBMCs中CD14+細胞表型,實驗組(A組)與對照組(B、C組)比較有顯著性差異(P<0.05)。2.應用優(yōu)化后的方法獲得PBMCs,計數(shù)后按1×106接種于24孔板,分為A、B兩組。B組為對照組,按文獻方法誘導,A組(實驗組)在貼壁約10小時后,倒置顯微鏡下觀察可
3、見有部分細胞呈懸浮生長,給予再次洗脫。將洗脫的懸浮細胞設為C組。三組均繼續(xù)按文獻方法誘導。第七天進行流式細胞儀檢測DCs表型CD80、CD86、CD83和HLA—DR的表達,確定三組DCs純度和成熟度的差異。3.無菌條件下取乳腺癌組織標本,相同大小兩份(以質(zhì)量計算),一份制備成為乳腺癌組織凍融抗原。另一份用特殊培養(yǎng)系統(tǒng)對乳腺癌細胞進行短期純化培養(yǎng),獲得個體化及純化的腫瘤細胞。同時,對乳腺癌細胞株SKBR-3進行培養(yǎng),將這兩種乳腺癌細胞均
4、制備成細胞凍融抗原。以Lowry法測定蛋白含量,以牛血清白蛋白作為標準。根據(jù)測定結果,蛋白濃度調(diào)至2mg/ml,用微孔濾膜(0.22um)過濾,液氮中保存?zhèn)溆?。應用本研究改良的方法誘導DCS,在第五天加入30ng/mlTNF-a的同時,分別加入個體化乳癌細胞、乳腺癌細胞株及乳腺癌組織凍融抗原100ug/ml,根據(jù)加入抗原不同分為A、B、C三組。第七天獲得成熟的DCs疫苗。流式細胞儀檢測CD80、CD83、CD86、HLA—DR的表達。結
5、果:1.經(jīng)流式細胞儀檢測,優(yōu)化后的分離條件可使CD14+細胞產(chǎn)出率>30%。2.對誘導七天的三組DCs進行流式細胞檢測。結果顯示:A、B兩組與C組比較各檢測表型均有顯著性差異,A、B兩組間比較CD80、CD83、CD86有顯著性差異(P<0.05)。3.A組(純化的腫瘤細胞凍融抗原致敏)、B組(乳癌細胞株凍融抗原致敏)、C組(乳癌組織凍融抗原致敏)三組DCs疫苗均高表達CD80、CD83、CD86、HIA-DR。A、B兩組與C組比較均有
6、顯著性差異(P<0.05)。A、B兩組比較無顯著性差異。結論: 1.本研究優(yōu)化后的對PBMCs提取方法可顯著提高CD14+細胞產(chǎn)出率。2.應用本研究改良后的誘導方法與傳統(tǒng)方法相比,可獲得更高純度和成熟度的DCs。3.個體化、純化的乳腺癌腫瘤抗原負載的DCs疫苗高表達CD80、CD83、CD86、HLA-DR免疫表型。4.本研究結果初步顯示,應用本研究建立的誘導高效、個體化DCs疫苗的方法,可獲得高表達CD80、CD83、CD86、HLA
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