小白菊內(nèi)酯及順鉑對人結(jié)腸癌SW620細胞增殖、凋亡影響的研究.pdf_第1頁
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文檔簡介

1、研究背景:
   結(jié)腸癌是人體最常見的惡性腫瘤之一,占胃腸道腫瘤的第2位。在歐美及中國都有很高的發(fā)病率,全球結(jié)腸癌每年新發(fā)病例超過100萬例。中國結(jié)腸癌發(fā)病率由上世紀70年代初的12/10萬增長到目前的56/10萬,升速約為每年4.2%,遠超2%的國際水平。目前,針對該病的治療主要是采用手術(shù)、化療為主的多種治療手段結(jié)合的綜合治療。對早期結(jié)腸癌的治療效果相對較好,Ⅰ~Ⅱ期結(jié)腸癌患者5年生存率可以達到70~90%以上。但對于中晚期結(jié)

2、腸癌患者而言,效果并不理想。因腫瘤侵犯、多處轉(zhuǎn)移等原因?qū)е螺^多患者就診時即失去根治性手術(shù)治療的機會而僅能進行姑息性手術(shù)、化療等姑息性治療。當然,手術(shù)+化療為主的綜合治療仍是中晚期結(jié)腸癌患者較為合適的選擇。但因有較多結(jié)腸癌患者長期化療后可能出現(xiàn)耐藥,對化療藥物敏感性較低而影響療效,甚至部分還可因出現(xiàn)較嚴重的化療副反應(yīng)而無法進行化療,從而影響整體治療效果。我們知道,腫瘤耐藥機制復雜,一般由以下三方面原因?qū)е?,即細胞動力學所致的耐藥、生化原因

3、所致的耐藥和藥理學原因所致的耐藥。臨床上如果兩藥能起協(xié)同作用,則可在不影響療效前提下減少相互藥物用量,進而有可能減少各自的毒副作用,克服由活性代謝物的低生成或高失活所引起的耐藥。臨床上如何克服腫瘤耐藥、提高癌細胞對化療藥物的敏感性、減少臨床化療藥物的用量,進而減少化療相關(guān)副反應(yīng),順利完成化療過程對提高治療效果具有重要的臨床意義。
   此前有研究表明,從菊科植物中提取的一種倍半萜內(nèi)酯化合物小白菊內(nèi)酯具有較強的抗腫瘤活性,在體外可

4、抑制多種腫瘤細胞株的生長增殖,并能誘導細胞凋亡,比如肝癌、膽管癌及多發(fā)性骨髓瘤等。另外,小白菊內(nèi)酯還可以增強癌細胞對化療藥的敏感性,如增強肝癌細胞對順鉑的敏感性。但目前該藥對結(jié)腸癌的作用方面的研究較少,它對結(jié)腸癌細胞的增殖與凋亡有何影響?是否可與其它化療藥物起協(xié)同作用、減少化療藥物的用量、進而在臨床上增強療效、減少化療毒副反應(yīng)?順鉑是在人體實體腫瘤治療中使用較為廣泛的抗腫瘤藥,結(jié)腸癌治療中亦有廣泛應(yīng)用,尤其在晚期結(jié)腸癌腹腔轉(zhuǎn)移產(chǎn)生腹水的

5、治療中有較好效果。雖然順鉑抗癌譜廣、作用強,但因其毒性反應(yīng)大、易產(chǎn)生耐藥性,導致順鉑在臨床應(yīng)用上受到一定的限制。因此尋找能夠增敏順鉑的治療藥物,減輕順鉑的毒副反應(yīng)具有重要的臨床意義。本研究中以人的結(jié)腸癌細胞SW620作為研究對象,采用小白菊內(nèi)酯及順鉑作用于SW620后,觀察它們對結(jié)腸癌細胞凋亡及增殖有何影響,二者聯(lián)用是否有協(xié)同、增效功能。這對臨床上能否提高結(jié)腸癌細胞對化療藥物的敏感性,減少化療藥物的用量,進而減少化療相關(guān)副反應(yīng)等具有一定

6、的指導作用。
   1目的:
   結(jié)腸癌細胞SW620經(jīng)過小白菊內(nèi)酯及順鉑作用后,通過MTS法及流式細胞儀檢測,觀察小白菊內(nèi)酯及順鉑對人結(jié)腸癌細胞SW620細胞增殖及凋亡方面的影響,了解小白菊內(nèi)酯與順鉑二者聯(lián)合使用是否可產(chǎn)生協(xié)同效應(yīng)?是否可以增強結(jié)腸癌細胞對順鉑的敏感性?同時通過熒光定量PCR和western blot方法檢測凋亡相關(guān)基因、蛋白的表達,初步探討其可能的影響機制,為小白菊內(nèi)酯用于臨床治療結(jié)腸癌,特別是與化

7、療藥物聯(lián)合應(yīng)用治療結(jié)腸癌提供理論依據(jù)。
   2方法:
   2.1實驗分組
   按細胞培養(yǎng)后藥物處理情況,實驗分組情況如下:
   A).MTS法檢測細胞增殖實驗分組為:
   溶劑對照組(DMSO組)
   小白菊內(nèi)酯(PTL)各濃度組(5μmol/L、10μmol/L、15μmol/L、20μmol/L)
   順鉑(DDP)各濃度組(2.5μmol/L、5μmol/L、7

8、.5μmol/L、10μmol/L)
   小白菊內(nèi)酯和順鉑聯(lián)合組(DDP5μmol/L+PTL10μmol/L、DDP5μmol/L+PTL20μmol/L、DDP10μmol/L+PTL10μmol/L、DDP10μmol/L+PTL20 mol/L)
   B).流式細胞儀(FCM)檢測細胞凋亡及PCR、Western Blot檢測凋亡相關(guān)基因、蛋白實驗分組均為:
   溶劑對照組(DMSO組)
  

9、 小白菊內(nèi)酯組(10μmol/L)
   順鉑組(5μmol/L)
   小白菊內(nèi)酯+順鉑組(10μmol/L+5μmol/L)
   注:從A部分實驗MTS檢測兩藥聯(lián)合各濃度組中選出抑制率最高的一組作為B部分實驗各組用藥濃度的選擇依據(jù)。
   2.2實驗方法
   2.2.1細胞培養(yǎng)及藥物處理
   SW620細胞接種于含10%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基中,置37℃5%CO2培

10、養(yǎng)箱中培養(yǎng),常規(guī)胰酶消化傳代。各組細胞藥物處理如下:
   2.2.2 MTS法檢測細胞增殖
   將對數(shù)期生長的SW620細胞消化后,計數(shù),調(diào)整細胞濃度為1×105個/ml,分到96孔板,每孔100ul,即每孔細胞為1×104個,常規(guī)培養(yǎng),待細胞貼壁后,進行藥物處理。藥物作用時間是24 h、48 h、72 h。收集各個時間點的細胞(0h,24h,48h,72h)加入MTS,比例為1/10。即100ul培養(yǎng)液加入10ul

11、檢測液。孵育4小時后,酶標儀讀板,MTS檢測讀取OD490數(shù)據(jù)。采用金正均法判定兩藥物是否具有協(xié)同作用。也稱概率相加法,具體的公式:q=EAB/(EA+EB-EA×EB),公式中EAB為聯(lián)合處理組的抑制率EA、EB分別為A藥和B藥單獨處理的抑制率,若q值在0.85~1.15間為兩藥合用單純相加,若q>1.15為有協(xié)同作用,若q<0.85表示兩藥合用有拮抗作用。
   2.2.3流式細胞儀檢測細胞的凋亡
   將SW620

12、細胞接種于6孔板,藥物處理48 h后收樣進行流式細胞凋亡檢測。胰酶消化細胞后,用預冷的PBS清洗細胞,將細胞輕輕重懸于預冷的1×結(jié)合緩沖液中使得其密度大約為1×106細胞/ml。加入1.25μlAnnexin V-FITC。室溫(18-24℃)避光反應(yīng)15分鐘。室溫800r/min離心5分鐘,去除上清。將細胞用0.5 ml預冷的1×結(jié)合緩沖液輕輕重懸。加入10μlPropidium Iodide。將樣本放置在冰上避光保存。用流式細胞儀檢

13、測分析。
   2.2.4熒光定量PCR檢測
   將SW620細胞接種于6孔板,處理24 h后收集細胞樣品,加入1ml Trizol溶液,吹打混勻,使細胞充分裂解,靜置5min;加入200μL氯仿,沉淀蛋白;離心去上清,加入等體積的異丙醇沉淀RNA,用75%乙醇洗滌兩次,加入15~60μL DEPC水溶解沉淀。取1μL RNA樣品50倍稀釋,在BioPhotometer plus艾本德核酸蛋白測定儀上測定OD值,OD2

14、60/OD280的比值大于1.8,說明制備的RNA較純,無蛋白質(zhì)污染。在RNase free的PCR管中進行RNA的逆轉(zhuǎn)錄,得到的eDNA用于PCR實驗。各因子檢測引物如表1所示。擴增條件是:95℃預變性5 min,95℃15 sec,50℃15 sec,72℃32 sec,30個循環(huán),72℃后延伸5 min。
   定量PCR檢測中所用到的引物:
   2.2.5 Western Blot檢測
   將SW62

15、0細胞接種于6孔板,處理48 h后收集細胞樣品,RIPA裂解液裂解細胞提取細胞總蛋白。BCA法測定蛋白總濃度,每孔上樣量為30μg,8~12的分離膠分離總蛋白,轉(zhuǎn)膜至PVDF膜,5的脫脂奶粉室溫封閉1h,PBS稀釋一抗(Bax,1∶500; Caspase-3,1∶1500; Caspase-9,1∶1000; RARP,1∶1000;Bcl-2,1∶1000)4℃孵育過夜,次日,TBST洗膜3次,每次5 min;合適二抗室溫孵育1h;

16、 TBST洗膜3次,每次5 min;于暗室中進行曝光。
   3結(jié)果:
   3.1 MTS檢測結(jié)果:將小白菊內(nèi)酯和順鉑稀釋成不同的濃度梯度,分別處理SW620細胞并進行MTS檢測,單因素方差分析的結(jié)果顯示各組間比較有統(tǒng)計學差異,小白菊內(nèi)酯及順鉑均對SW620細胞的增殖有抑制作用。多重比較顯示各試驗組均與溶劑對照組有統(tǒng)計學差異。不同試驗時間和不同試劑類型均會影響SW620細胞的增殖抑制率,對于同一試劑,不同濃度對抑制率亦

17、有影響。對試劑類型和試驗時間進行多重比較,結(jié)果顯示試驗類型三組間均有顯著差異,小白菊內(nèi)酯和順鉑(PTL+DDP)組對SW620細胞的增殖抑制率最高,其次是小白菊內(nèi)酯(PTL)組,順鉑(DDP)組最低。相同濃度下小白菊內(nèi)酯和順鉑對SW620細胞的增殖抑制率亦顯示小白菊內(nèi)酯組比順鉑組高,二者對SW620細胞的增殖抑制作用均表現(xiàn)出濃度依賴性。聯(lián)合作用時對SW620細胞的增殖抑制作用較單藥作用時增強。金正均法檢測顯示,小白菊內(nèi)酯與順鉑聯(lián)合組各組

18、q值均介于0.85~1.15之間,說明兩藥聯(lián)用時對SW620細胞的增殖的抑制作用可相加,亦無拮抗作用。但兩藥在抑制SW620細胞的增殖方面沒有協(xié)同效應(yīng)。
   3.2流式細胞儀檢測顯示小白菊內(nèi)酯和順鉑單用組的SW620細胞凋亡率顯著高于溶劑對照組,二者聯(lián)用組細胞凋亡率高于單藥組。溶劑對照組、小白菊內(nèi)酯組、順鉑組和小白菊內(nèi)酯與順鉑聯(lián)用組早期凋亡的比例分別為1.25%、5.69%、3.65和8.36%,晚期凋亡的比例卻變化不大,分別

19、為5.21%、6.58%、6.03%和7.86%。
   3.3熒光定量PCR檢測檢測凋亡相關(guān)基因caspase3、caspase9、PARP、Bcl-2及Bax的mRNA水平的表達。結(jié)果提示:小白菊內(nèi)酯和順鉑的單獨作用可以明顯下調(diào)Bcl-2的表達水平,二者聯(lián)合作用時效果更明顯。順鉑處理SW620細胞后,caspase3、caspase9、Bax及PARP的mRNA水平的表達量出現(xiàn)了上調(diào);小白菊內(nèi)酯處理后,caspase3、ca

20、spase9、Bax及PARP的mRNA水平的表達量亦出現(xiàn)了上調(diào);聯(lián)合作用后,四個凋亡相關(guān)基因的mRNA水平的表達較單用組上調(diào)更明顯。
   3.4用western blot方法檢測凋亡相關(guān)蛋白的表達,結(jié)果顯示小白菊內(nèi)酯作用后SW620細胞中的Bcl-2蛋白的表達水平明顯降低,而Bax蛋白的表達水平則明顯增高;小白菊內(nèi)酯處理后,SW620細胞中caspase3、caspase9及PARP的蛋白水平的表達量也出現(xiàn)了上調(diào)。使用順鉑處

21、理的細胞,檢測蛋白的表達趨勢與小白菊內(nèi)酯相似。二者聯(lián)合時,上述變化更加明顯。
   4結(jié)論:
   4.1小白菊內(nèi)酯及順鉑對SW620細胞的增殖均有抑制作用,并均表現(xiàn)出濃度依賴性。兩藥聯(lián)用時對SW620細胞的增殖的抑制作用可相加,無拮抗作用。但兩藥在抑制SW620細胞的增殖方面沒有協(xié)同效應(yīng)。
   4.2小白菊內(nèi)酯及順鉑均能促進SW620細胞凋亡,二者聯(lián)用時效果更明顯。二者對SW620細胞凋亡的影響可能是通過下調(diào)

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