增強型綠色熒光蛋白基因在大腸桿菌中的表達【畢業(yè)設計】

1、<p><b>　　本科畢業(yè)設計</b></p><p><b>　?。?0_ _屆）</b></p><p>　　增強型綠色熒光蛋白基因在大腸桿菌中的表達</p><p>　　所在學院 </p><p>　　專業(yè)班級

2、 生物技術 </p><p>　　學生姓名 學號 </p><p>　　指導教師 職稱 </p><p>　　完成日期 年 月 </p><p><b>　　目 錄</b

3、></p><p><b>　　摘要3-I</b></p><p>　　ABSTRACT錯誤!未定義書簽。</p><p><b>　　引 言3</b></p><p><b>　　1 材料與方法5</b></p><p><b>

4、;　　1.1材料5</b></p><p>　　1.1.1 菌株與質粒5</p><p>　　1.1.2 工具酶及試劑5</p><p>　　1.1.3 培養(yǎng)基5</p><p><b>　　1.2方法5</b></p><p>　　1.2.1 引物設計及合成5</p

5、><p>　　1.2.2 目的基因EGFP編碼序列的克隆5</p><p>　　1.2.3 PCR擴增產物的鑒定6</p><p>　　1.2.4 目的片段回收6</p><p>　　1.2.5 連接6</p><p>　　1.2.6 大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞的制備6</p><p>　

6、　1.2.7 轉化7</p><p>　　1.2.8 陽性克隆的篩選與鑒定7</p><p>　　1.2.9 pMD19-EGFP質粒的抽提8</p><p>　　1.2.10 重組質粒pET-28a-EGFP的構建及鑒定8</p><p>　　1.2.11 轉EGFP基因大腸桿菌的獲得及原核表達條件的研究10</p>

7、<p>　　2 結果與分析11</p><p>　　2.1目的基因EGFP編碼片段的克隆11</p><p>　　2.2pMD19-EGFP質粒的構建和鑒定11</p><p>　　2.3重組質粒pET-28a-EGFP的構建和鑒定12</p><p>　　2.4轉EGFP基因的大腸桿菌原核表達條件的研究13&l

8、t;/p><p><b>　　3 討論14</b></p><p><b>　　4 結論15</b></p><p>　　致謝錯誤!未定義書簽。</p><p>　　參考文獻錯誤!未定義書簽。</p><p>　　摘要：綠色熒光蛋白(green fluorescent p

9、rotein，GFP)基因是在細胞內穩(wěn)定表達，在藍光或長紫外光的激發(fā)下，不需要任何反應底物及其他輔助因子就能發(fā)出綠色熒光的新型報告基因。增強型綠色熒光蛋白(enhanced green fluorescent protein，EGFP)是GFP的一個突變體，發(fā)出的熒光強度要比GFP大六倍以上，更適合作為一種報告基因來研究基因表達、調控、細胞分化及蛋白質在生物體定位和轉運等。本實驗旨在構建以EGFP為標記的原核表達載體，觀察EGFP基因在

10、大腸桿菌中的表達情況，探索其作為報告基因在以后研究中應用的可能性。根據已知的EGFP序列，設計一對引物FEGFP和REGFP，分別含有NdeI和EcoRI酶切位點，通過PCR從pFGC-EGFP質粒中克隆EGFP編碼序列，并將其與pMD19 T-Vector連接，以此構建pMD19-EGFP。將其雙酶切后與pET-28a連接，得到重組質粒pET-28a-EGFP。轉化大腸桿菌BL21，經IPTG誘導表達，在誘導的不同時間收集菌體沉淀，并

11、置于長波紫外線下照射，觀察細胞中綠色熒光蛋白的表達量。經IPT</p><p>　　關鍵詞：增強型綠色熒光蛋白；重組質粒；大腸桿菌；原核表達</p><p>　　Abstract: The green fluorescent protein (GFP)gene is a new reporter gene which can be expressed in living cells, un

12、der excitation of long UV light or blue light, green fluorescence can be emitted without other external substrate. The enhanced green fluorescent protein(EGFP)is a mutant of GFP，which can emit six time higher fluorescenc

13、e. As a reporter gene, it is more suitable for studying gene expression and regulation, cell differentiation and protein localization and transfer in living organism</p><p>　　Keyword: EGFP; recombinant plasm

14、id; E.coli; prokaryotic expression</p><p><b>　　引 言</b></p><p>　　在水母、水螅和珊瑚等腔腸動物體內存在一類生物發(fā)光蛋白——綠色熒光蛋白(green fluorescent protein，GFP)[1]。它在紫外或藍色波長范圍的光線激發(fā)下，依靠鈣離子的幫助能夠發(fā)出綠色熒光，并在活細胞內穩(wěn)定表達。GFP

15、的分子量為27kD，由238個氨基酸構成，由11個β片層組成桶狀構成疏水中心，第65～67位氨基酸(Ser-Tyr-Gly)形成發(fā)光團，是主要發(fā)光的位置。發(fā)光的過程中還需要冷光蛋白(Aequorin)的幫助，且這個冷光蛋白與鈣離子可產生交互作用，由此產生綠色熒光[2]。它在395nm處具有最大吸收高峰，在475nm處還有一個肩峰[3]。作為一種新型的標記分子，GFP具有諸多優(yōu)點而備受關注：(1)便于檢測：無需底物和輔助因子提供能源，可被

16、光直接激發(fā)；(2)熒光特性穩(wěn)定：對高溫(60℃) 、堿性、除垢劑、鹽、有機溶劑等大多具有較強抗性，對光漂白有較強的耐受性，(3)對細胞或組織無毒害：GFP與目的基因融合后對目的基因的表達沒有多大的影響，也不會損害宿主細胞；(4)通用性和共用性：GFP的表達不受宿主范圍的限制，也沒有細胞種類和部位的限制；(5)分子量小，便于</p><p>　　正是由于GFP具有上述優(yōu)點，它在分子生物學和細胞生物學研究中有廣闊的應

17、用前景。不同種的蛋白質N端或C端能與GFP融合，但其天然蛋白的特性又不會受到影響，因此，GFP能用來研究蛋白質在細胞中的定位、轉移、相互作用，作為一種“熒光標簽”，它可用于研究。Baulcombe等將馬鈴薯X病毒和融合蛋白載體PVX-GFP接種菸草(N. clevelandii) 1～2d 后，在紫外光下可以直接觀察到病毒侵染的確切部位[9]。KÖhler等用擬南芥葉綠體蛋白的recA序列連接GFP，結果表明GFP標記的rec

18、A序列存在于葉綠體的基質中[10]。</p><p>　　GFP常常用于構建基因工程的表達載體。Summers等用GFP作為報告基因構建兩種轉錄型的穿梭報告載體并用于絲狀藍藻的研究[11]。Gupta等利用GFP構建載體并使其在大腸桿菌重組突變體中的過量表達[12]。孫麗萍等構建了人NOD2基因啟動子的綠色熒光蛋白表達載體并轉染HEK293T細胞，為進一步深入探索NOD2啟動子的始動原因及調控機制奠定基礎[13]

19、。姜伯樂等將增強型綠色熒光蛋白基因編碼序列克隆到不含啟動子的載體pLAFR6上，構建報告質粒pLZY，為研究目的基因在不同宿主中的表達和研究植物病原細菌Ⅲ型效應物蛋白的植物亞細胞定位提供了材料[14]。何淑雅等將攜帶人脆性X相關基因1(Fragile X related gene l，F(xiàn)XR1)與EGFP的融合并構建表達載體，為研究FXR1基因在脆性X 綜合征中的作用機制奠定基礎[15]。張鯤等構建了大腸桿菌雙順反子表達載體，并中研究綠

20、色熒光蛋白的表達水平[16]。</p><p>　　盡管GFP作為報告基因具有許多優(yōu)點，但天然的GFP仍存在一些缺陷而使其無法更好地應用于科學研究，如發(fā)光較弱，耐光性差。為了解決上述問題，需要對GFP作出一些改進，主要包括以下兩個方面：(1)改變GFP的熒光強度，(2)改變GFP的顏色。通過點突變的方法將Ser65→Thr，增強了熒光強度，另外，Phe64→Leu點突變使GFP在哺乳動物細胞37℃的培養(yǎng)條件下能更

21、有效地進行構象折疊。向GFP引入遺傳突變可以獲得不同顏色的變種，改變GFP顏色的點突變主要針對其65-67的發(fā)光位點及構象上接近發(fā)光位點的氨基酸[17-19]。增強型GFP(enhanced GFP)是其中最具有代表性的一種，它的熒光強度顯著提高。因此更適合作為報告基因來研究基因的表達、信號轉導、蛋白運輸與定位等。</p><p>　　在蛋白水平檢測導入的外源基因是否表達的過程中，我們往往需要通過多次的蛋白純化和

22、電泳檢測的步驟或者通過Western 雜交的方法，整個過程耗時長，步驟繁瑣，無法迅速得知蛋白是否表達。本實驗可以利用增強型綠色熒光蛋白為標記構建一個可以直觀地觀察蛋白表達情況的原核表達載體pET-28a-EGFP，試圖在大腸桿菌中克隆并高效表達該載體，以利進一步研究其生化特，并進一步探索其作為報告基因的優(yōu)勢，為其在以后的研究奠定基礎。</p><p><b>　　材料與方法</b></

23、p><p><b>　　材料</b></p><p><b>　　菌株與質粒 </b></p><p>　　大腸桿菌DH5α、Top10和BL21菌株均為本實驗室保存。質粒pFGC-EGFP，pET-28a為本實驗室保存，質粒pMD19-T購自TaKaRa公司。</p><p>　　工具酶及試劑

24、 </p><p>　　小量膠回收試劑盒、質粒小量抽提試劑盒及IPTG均購自上海生物工程公司，限制性內切酶EcoR I、Nde I、Solution I、DNA marker均購自TaKaRa公司，其他所用試劑均為國產分析純。</p><p><b>　　培養(yǎng)基 </b></p><p>　　采用LB培養(yǎng)基，其他試劑及培養(yǎng)基均由本實驗

25、室配制。</p><p><b>　　方法</b></p><p>　　引物設計及合成 </p><p>　　根據GenBank中已知的EGFP編碼序列，自行設計1對引物FEGFP、REGFP。</p><p>　　上游引物FEGFP：5＇-CCATATGGTGAGCAAGGGCGAGGA-3＇，含有Nde I酶切位

26、點，</p><p>　　下游引物REGFP：5＇-GGAATTCCTAGGATCCCTTGTACAGCT-3＇，含有EcoR I酶切位點。</p><p>　　引物由上海生物工程公司合成。</p><p>　　目的基因EGFP編碼序列的克隆 </p><p>　　以實驗室存有的質粒pFGC-EGFP為模板，分別以引物FEGFP、REGF

27、P進行PCR擴增， PCR擴增反應體系如下：</p><p><b>　　反應程序設置如下：</b></p><p>　　PCR擴增產物的鑒定</p><p>　　稱取0.2g瓊脂糖置于錐形瓶中，加入50×TAE電泳緩沖液50ml，置于微波爐中加熱至瓊脂糖完全融化，一般煮沸三次，配制成1%瓊脂糖凝膠溶液。將EB加入錐形瓶中并混勻，之后

28、倒入選定的膠膜中，插入相應的梳子。過20min后待凝膠完全凝固，小心拔出梳子，將凝膠放入裝有50×TAE電泳緩沖液的電泳槽中，使電泳液剛沒過膠面（1mm），取5μl待電泳的DNA樣品與1μl 的6×Loading Buffer在封口膜上混勻，用移液槍將樣品加到梳孔中，以100V電泳20min左右，在紫外燈下觀察結果和拍照。</p><p><b>　　目的片段回收</b>

29、</p><p>　　打開水浴鍋，將溫度設到55-60℃，待溫度上升后將Elution Buffer放在水浴鍋里預熱。</p><p>　　將空的Eppendorf管置于電子天平上稱重，記下重量之后將切下的膠塊放入管中再稱重量，兩者相減，若兩者之差小于300mg（針對1%瓊脂糖凝膠溶液），再加入300μl Binding BufferⅡ，放入水浴鍋10min。</p><

30、;p>　　將管內的溶液轉移到帶有離心柱的收集管內，放置2 min，之后10000 rpm離心1min，棄去外套管內的廢液。</p><p>　　加入500 μl的wash solution，10000 rpm離心1min，棄去外套管內的廢液。</p><p>　　重復上述步驟之后倒掉外套管內的廢液后離心10000 rpm離心30 s，打開蓋子，在溫室下晾干10 min。</p&

31、gt;<p>　　將離心柱放入Eppendorf管中，加入40 μl的已經預熱的Elution Buffer。</p><p>　　放置2 min后，10000 rpm離心1min后放置-20℃冰箱中保存。</p><p><b>　　連接</b></p><p>　　使用pMD19-T Vector（TaKaRa，日本）進行連接

32、反應，4℃連接過夜。反應體系如下：</p><p>　　大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞的制備</p><p>　　取-70 ℃甘油保存的DH5α菌種20 μl，接種于20 ml LB液體培養(yǎng)基中，37℃下220-250 rpm振蕩過夜。</p><p>　　取上述菌液20 μl，接種于20 ml LB液體培養(yǎng)基中，37 ℃下220-250 rpm振蕩2.5-4 h，至O

33、D800=0.5-0.6。取上述菌液1 ml于無菌Eppendorf管中，蓋上蓋，4℃下5000 rpm離心5 min。</p><p>　　去上清，吸干管底殘留的LB培養(yǎng)基，用4℃冰浴預冷的CaCl2（0.1 M）溶液400 μl重懸菌體，用移液槍混勻。</p><p>　　置于4 ℃培養(yǎng)箱，冰浴30 min。</p><p>　　4 ℃下4000 rpm離心10

34、 min，徹底去上清，用200 μl CaCl2（0.1 M，預冷）重懸菌體，用移液槍輕輕混勻。</p><p>　　置于冰浴2-7 h可用于轉化。</p><p><b>　　轉化</b></p><p>　　使用自制的大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞進行轉化。</p><p>　　無菌條件下，取10 μl連接產物，加入20

35、0 μl大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞中，用槍頭輕輕混勻（冰上操作）。</p><p>　　4 ℃冰浴30 min。</p><p>　　42 ℃精確熱激90 s。</p><p>　　立即轉入冰水中冰浴1-2 min后，恢復到室溫。</p><p>　　加入800 μl無抗生物LB培養(yǎng)基，混勻。</p><p>　　將E

36、ppendorf管置于三角瓶中，37℃恒溫搖床 180 rpm振蕩培養(yǎng)2 h。</p><p>　　室溫下5000 rpm離心4 min，吸去上清900 μl，余下100 μl液體重懸菌體。</p><p>　　將菌液加入37 ℃預熱的LB固體培養(yǎng)基（40 μg/ml CAB），涂布至干。</p><p>　　將培養(yǎng)基倒置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中，培養(yǎng)12-24 h。

37、</p><p>　　陽性克隆的篩選與鑒定</p><p>　　無菌條件下，隨機挑取4個單菌落分別接種于4個裝有1 ml LB液體培養(yǎng)基（40 μg/ml CAB）的Eppendorf管中。</p><p>　　置于37℃恒溫搖床，180 rpm振蕩培養(yǎng)4 h。</p><p>　　進行菌液PCR鑒定，擴增產物使用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。建立

38、PCR反應體系如下：</p><p><b>　　反應程序如下：</b></p><p>　　pMD19-EGFP質粒的抽提</p><p>　　打開水浴鍋，將Elution Buffer預熱至60 ℃。</p><p>　　將solution Ⅰ放在冰上。</p><p>　　從每管中分別取1m

39、l 菌液，12，000 rpm離心2 min 收集菌體，倒盡或吸干培養(yǎng)基。</p><p>　　在菌體沉淀中加入250 μl SolutionⅠ，吸打至徹底懸浮菌體。</p><p>　　加入250μl Solution Ⅱ，并將Eppendorf管橫放在食指上，立即溫和顛倒10次至充分混勻。</p><p>　　加入250μl Solution Ⅲ，立即溫和顛倒混

40、勻10次，方法與（5）一樣。</p><p>　　12，000 rpm離心10 min。</p><p>　　將上清全部小心移入吸附柱，8，000 rpm 離心30 s，倒掉收集管中的液體，將吸附柱放入同一個收集管中。</p><p>　　向吸附柱中加入500μl Wash Solution，10，000 rpm 離心1min。倒掉收集管中的液體，將吸附柱放入同一個

41、收集管中。</p><p><b>　　重復步驟8一次。</b></p><p>　　將空吸附柱和收集管放入離心機，12，000 rpm 離心2 min。</p><p>　　將吸附柱放入干凈的1.5 ml Eppendorf管中，在吸附膜中央加入50 μl Elution Buffer，室溫靜置2 min，10，000 rpm 離心1 min

42、，將所得到的質粒DNA溶液置于-20 ℃保存。</p><p>　　重組質粒pET-28a-EGFP的構建及鑒定</p><p>　　pMD19-EGFP質粒經NdeⅠ和EcoRⅠ雙酶切，酶切反應體系如下：</p><p>　　反應條件為37℃水浴6h，將pET-28a質粒經NdeⅠ和EcoRⅠ雙酶切，酶切反應體系如下：</p><p>　　

43、反應條件為37℃水浴6h。將所有酶切產物置于65°C的水浴鍋中30min之后使用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。紫外燈下切膠回收，在SolutionⅠ作用下，4℃連接過夜，連接體系如下，得到的重組質粒命名為pET-28a-EGFP。</p><p>　　連接產物轉化入大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞，在含有卡那霉素（40 μg/ml）的培養(yǎng)基上挑陽性克隆擴增，鑒定。擴大培養(yǎng)12h之后用質粒提取試劑盒提取質粒。再轉化至

44、大腸桿菌BL21感受態(tài)細胞，在含有卡那霉素的培養(yǎng)基上挑陽性克隆擴增，經EcoR I、Nde I雙酶切鑒定和PCR鑒定，PCR反應體系和反應條件同目的基因EGFP克隆時的擴增條件(重組質粒pET-28a-EGFP的構建見圖1)。</p><p>　　圖1 重組質粒pET-28a-EGFP的構建圖</p><p>　　Fig.1　The construction of recombinant

45、plasmid pET-28a-EGFP</p><p>　　轉EGFP基因大腸桿菌的獲得及原核表達條件的研究 </p><p>　　取10μl 重組質粒加入大腸桿菌BL21感受態(tài)細胞中，將轉化菌液涂布含卡那霉素的平板上，37℃培養(yǎng)過夜。篩選大腸桿菌陽性轉化子進行PCR擴增及鑒定。經1%瓊脂糖凝膠電泳檢測之后，保存含有EGFP基因的陽性克隆。將轉EGFP基因大腸桿菌接種于LB培養(yǎng)基中，

46、37℃培養(yǎng)過夜。過夜培養(yǎng)物接入LB培養(yǎng)液中，37℃振蕩培養(yǎng)，加入IPTG至終濃度為1 mmol/L，在誘導0，1，2，3，4，5 h后離心收集菌體沉淀，并置于長波紫外線下照射，觀察細胞中綠色熒光的表達。</p><p><b>　　結果與分析</b></p><p>　　目的基因EGFP編碼片段的克隆</p><p>　　以質粒pFGC-EGF

47、P為模板，用引物擴增獲得的PCR產物經過1%瓊脂糖凝膠電泳，在750 bp處有單一的擴增條帶（圖2），與EGFP編碼序列長度相符合，將其命名為EGFP。</p><p>　　圖2 EGFP編碼片段電泳圖</p><p>　　1. DL2000 Marker 2. EGFP基因片段</p><p>　　Fig.2 Electrophoresis analysis

48、 of PCR products of EGFP gene</p><p>　　1. DL2000 Marker 2. Fragments of EGFP gene</p><p>　　pMD19-EGFP質粒的構建和鑒定</p><p>　　將PCR擴增產物從瓊脂糖凝膠中回收后，與pMD19-T載體以Solution I 4℃連接過夜，轉化入大腸桿菌菌株DH5α

49、，在含有羧芐青霉素的培養(yǎng)基上挑取白色菌落通過PCR驗證，獲得EGFP基因目的條帶750bp（圖3.1），擴大培養(yǎng)12h之后抽提質粒，通過限制性內切酶Nde I、EcoR I進行雙酶切驗證，得到750bp 的EGFP小片段（圖3.2），成功構建 pMD19-EGFP質粒。</p><p>　　圖3.1 PCR鑒定pMD19-EGFP質粒 圖3.2 雙酶切鑒定pMD19-EGF

50、P質粒</p><p>　　1. DL2000 Marker 2,3. EGFP基因片段 1. DL2000 Marker 2. EGFP基因片段</p><p>　　Fig.3.1 Identification of pMD19-EGFP plasmid by PCR Fig.3.2 Identification of pMD19-EGFP

51、 plasmid by </p><p>　　1. DL2000 Marker 2,3. Fragments of EGFP gene restrictive enzyme digestion </p><p>　　1. DL2000 Marker 2. Fragments of EGFP gene</p><p>　　重

52、組質粒pET-28a-EGFP的構建和鑒定</p><p>　　將pET-28a和pMD19-EGFP質粒同時進行雙酶切，分別回收大小片段之后將其連接，構建得到的重組質粒命名pET-28a-EGFP，將其轉化至大腸桿菌BL21，經過夜培養(yǎng)后，提取質粒，分別以PCR法和限制性內切酶Nde I、EcoR I進行雙酶切鑒定，經瓊脂糖凝膠電泳，發(fā)現(xiàn)該片段約750 bp，與預期值相符合（圖4）。</p>&l

53、t;p>　　圖4重組質粒pET-28a-EGFP的PCR和雙酶切鑒定</p><p>　　1. DL2000 Marker 2. 未酶切重組質粒pET-28a-EGFP</p><p>　　3. EGFP基因片段 4. NdeⅠ和EcoRⅠ雙酶切重組質粒pET-28a-EGFP</p><p>　　Fig.4 Identification of reco

54、mbinant plasmid by PCR and restrictive enzyme digestion</p><p>　　1. DL2000 Marker 2. pET-28a-EGFP plasmid</p><p>　　3. Fragments of EGFP gene 4. pET-28a-EGFP plasmid digested with NdeⅠand EcoRⅠ

55、</p><p>　　轉EGFP基因的大腸桿菌原核表達條件的研究</p><p>　　轉EGFP基因大腸桿菌經IPTG誘導表達后，分別在0，1，2，3，4，5 h時離心取菌液沉淀，經長波紫外線照射后，肉眼可見明亮的綠色熒光。結果表明（圖5），隨著誘導時間的增加，菌體發(fā)出的熒光量度也逐漸增加，說明IPTG誘導EGFP的表達量是隨著時間的延長而增加。</p><p>　

56、　圖5 經IPTG誘導后EGFP基因在大腸桿菌BL21中表達</p><p>　　Fig.5 Expression of EGFP protein in Escherichia coli cells in the induction of IPTG</p><p><b>　　討論</b></p><p>　　綠色熒光蛋白的表達不受宿主范圍

57、的限制，也沒有細胞種類和部位的限制，因此我們采用技術較為成熟的大腸桿菌作為EGFP的宿主細胞。大腸桿菌是最為常見的表達蛋白的實驗系統(tǒng)，它有繁殖速度快，操作簡單，容易培養(yǎng)等優(yōu)點，大腸桿菌系統(tǒng)表達外源基因產物的水平遠高于其它的基因表達系統(tǒng)，表達的目的蛋白量甚至能超過細菌總蛋白的50%。因此，它非常適合作為表達EGFP的宿主。</p><p>　　將EGFP編碼序列克隆至原核表達載體pET-28a上，轉化大腸桿菌BL2

58、1，IPTG誘導不同時間后，經紫外照射，菌體呈明亮的綠色熒光，且不同的誘導時間下菌體發(fā)出的熒光強度有所區(qū)別，說明本實驗成功構建了重組質粒pET-28a-EGFP，并且EGFP在大腸桿菌中得到高效的表達。</p><p>　　實驗中發(fā)現(xiàn)，對pMD19-EGFP和pET-28a質粒分別進行雙酶切時，酶切體系中各成分的含量也會影響酶切的效率。同時，在大小片段的連接過程中我們也發(fā)現(xiàn)，體系中各成分含量的不同也有一定的影響。

59、本實驗中酶切和連接體系中各成分的含量只能作為參考，并不是最佳的濃度。另外，從大腸桿菌BL21中提取質粒時發(fā)現(xiàn)，增加菌液用量對提取結果影響幾乎沒有影響，提取的質粒用于雙酶切之后條帶較暗，亮度較低，這可能是由于大腸桿菌BL21是表達宿主，不適合用于保存以及提取質粒。</p><p>　　氯霉素乙酰轉移酶（CAT）、β-半乳糖苷酶基因（LacZ）、熒光素酶基因是目前最為常用的報告基因，但實驗室最為常用的是β-半乳糖苷酶

60、基因，它檢測的時候需要加入一些外源底物，當其與外源基因融合后一般需要多次純化蛋白的步驟才能檢測外源基因的表達 [20]。同以往常用的報告基因相比，GFP優(yōu)勢非常明顯，它的檢測不需要任何外源性底物和輔助因子，無毒、穩(wěn)定、無污染，而且可以在紫外或藍光激發(fā)下直接觀察[21,22]。新的研究表明，它是一個良好的細胞間信號傳遞的動態(tài)熒光標記分子，既具有敏感的標記檢測率，又沒有放射性的危害，可以跟蹤觀測第二信使；作為報告基因，它是能在活細胞中表達的

61、發(fā)光蛋白，其作用是任何其它酶類報告蛋白無法比擬的[23,24]。在檢測時經紫外照射，肉眼便可見菌體沉淀發(fā)出綠色熒光，能夠直觀，及時地反映蛋白的表達。經IPTG誘導之后，表達EGFP的大腸桿菌生長情況良好，說明EGFP對宿主細胞沒有毒性，誘導之后的大腸桿菌能長時間表達綠色熒光，說明EGFP的熒光性質穩(wěn)定，不容易猝滅。</p><p>　　在構建原核表達載體的研究中，陸惠萍等利用GFP基因(GFP-S65T)構建載體

62、，通過SDS-PAGE電泳檢測其在大腸桿菌中的表達[25]，段斯亮等利用EGFP構建原核表達載體，也是先通過SDS-PAGE電泳檢測蛋白的分子量再通過紫外照射檢測EGFP在大腸桿菌中的表達[26]。本實驗省去了SDS-PAGE電泳檢測EGFP蛋白的分子量，大大地提高了蛋白檢測的效率。利用EGFP作為篩選標記可用于載體的構建及鑒定[27]。EGFP的相對分子質量較小，其活性形式為單體，是一種十分理想的報告蛋白與標記物，且EGFP與其他蛋白

63、的融合表達已有很多成功的例子[28,29]。因此，EGFP在原核表達系統(tǒng)中可以作為一個很好的報告基因。</p><p>　　雖然綠色熒光蛋白基因有著許多其他報告基因無法具有的優(yōu)點，但在目前看來仍有不足。由于它的熒光反應不是酶反應，當細胞本身還存在一些可以受藍光激發(fā)和產生綠色熒光的物質，或者GFP表達頻率不高的情況下，GFP必須在宿主細胞中大量地表達，才有可能使檢測的結果不會產生較大的偏差，否則會使檢測產生一些假相

64、，不易對熒光進行定量的測量。</p><p>　　本實驗成功地構建了重組質粒pET-28a-EGFP，并使其在大腸桿菌細胞中得到了高效的表達，但對其作為報告基因還有哪些好處則需進一步的研究。</p><p><b>　　結論</b></p><p>　　（1）通過PCR擴增EGFP目的片段，并將其與pMD19 T-Vector連接，轉化大腸桿菌

65、DH5α，篩選陽性克隆， PCR和雙酶切法驗證，成功構建pMD19-EGFP質粒。</p><p>　?。?）將pMD19-EGFP與pET-28a質粒用Nde I、EcoRⅠ同時進行雙酶切，回收大、小片段之后連接，轉化大腸桿菌DH5α，篩選陽性克隆并鑒定，擴大培養(yǎng)后抽提質粒，轉化大腸桿菌BL21，篩選陽性克隆，通過PCR和雙酶切法驗證，成功構建pET-28a-EGFP質粒。</p><p&g

66、t;　?。?）將轉EGFP基因的大腸桿菌接種于LB液體培養(yǎng)基中，經IPTG誘導表達，在誘導的0h，1h，2h，3h，4h，5h收集誘導表達的菌體，并置于長波紫外線下照射，觀察細胞中綠色熒光蛋白的表達量。經IPTG誘導后，細菌培養(yǎng)物在長波紫外線照射下發(fā)出明亮的綠色熒光。</p><p>　　唐孝青, 李斌, 伍小兵, 等. 綠色熒光蛋白及其應用的研究進展[J]. 陜西農業(yè)科學, 2007, (1): 123~124

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