重組人可溶性Tim-3原核表達載體的構建及其重組蛋白的優(yōu)化表達.pdf

1、目的:
　　1、克隆人Tim-3基因胞外段序列，構建人可溶性Tim-3（sTim-3）的重組質粒表達載體pET28a-sTim-3-EGFP。
　　2、重組質粒轉化感受態(tài)大腸桿菌BL21(DE3)進行IPTG誘導表達，并對其表達條件進行優(yōu)化，以獲得較多可溶性的EGFP-sTim-3融合蛋白。
　　方法:
　　按照Trizol試劑說明書(Invitrogen)取健康人外周血單個核細胞提取總RNA，按照逆轉錄試劑說明

2、書(Takara)構建人Tim-3基因的cDNA文庫。根據(jù)Genebank中Tim-3序列結合跨膜預測軟件設計Tim-3胞外段上下游引物，RT-PCR擴增Tim-3基因的胞外段片段sTim-3。產(chǎn)物與pMD18-T載體(Takara)連接轉化感受態(tài)大腸桿菌DH5α，氨芐西林(Amp)篩選陽性克隆，進行菌液PCR、提取質粒雙酶切鑒定，后選取陽性克隆菌液送公司測序。對陽性菌株所提質粒及已構建好的原核表達載體pET28a-EGFP質粒進行相同

3、內切酶雙酶切和瓊脂糖凝膠電泳回收目的DNA片段，將純化回收的sTim-3片段和EGFP-pET28a片段連接構建pET28a-sTim-3-EGFP重組質粒。將連接產(chǎn)物轉化感受態(tài)大腸桿菌DH5α進行卡那霉素(kan)抗性篩選，挑取單菌落培養(yǎng)，經(jīng)PCR、雙酶切及測序鑒定陽性克隆。提取鑒定陽性的重組質粒轉化感受態(tài)大腸桿菌BL21(DE3)，挑取單克隆菌株培養(yǎng)進行PCR和雙酶切驗證。熒光顯微鏡下確定熒光較強的單菌落培養(yǎng)菌液行IPTG誘導表達，

4、并進行SDS-PAGE電泳、考馬斯亮藍染色和Western blot檢測以驗證目的蛋白。通過調整IPTG濃度、誘導時機、誘導溫度與誘導時間優(yōu)化蛋白表達條件。
　　結果:
　　1、應用RT-PCR技術，從人外周血單個核細胞總RNA中擴增得到約620 bp的Tim-3基因的胞外段，與載體pET28a-EGFP連接，對重組體進行的菌液PCR、雙酶切驗證和測序分析結果表明:成功構建了原核表達載體pET28a-sTim-3-EGFP。

5、
　　2、重組質粒轉化感受態(tài)大腸桿菌BL21(DE3)進行IPTG誘導表達。誘導前后熒光顯微鏡的對比觀察顯示誘導后綠色熒光明顯增強，SDS-PAGE電泳和考馬斯亮藍染色以及采用His標簽單抗和EGFP標簽單抗進行的Western blot檢測驗證了約為50.0 KDa的sTim-3-EGFP融合蛋白的表達。
　　3、蛋白表達條件優(yōu)化的SDS-PAGE電泳和考馬斯亮藍染色結果顯示一定范圍內的IPTG濃度對蛋白表達量沒有影響;溫