禽致病性大腸桿菌PhoP-Q蛋白的表達純化及其毒力調控分析.pdf

1、禽致病性大腸桿菌(Avian Pathogenic Escherichia coli,APEC)能引起禽類高死亡率給養(yǎng)禽業(yè)的發(fā)展帶來重大危害。存在于APEC中的PhoP/Q二元調控系統(tǒng)是由菌體外膜蛋白PhoQ感應外界環(huán)境變化，繼而將信號傳遞給PhoP，PhoP能夠調控病原菌毒力基因表達，這對菌體侵襲機體上皮細胞導致機體致病起著關鍵作用。探索PhoQ介導PhoP調控的APEC毒力基因靶點，針對APEC檢測受PhoP調控的外膜蛋白、內毒素等

2、毒力相關基因，為后續(xù)進一步明確PhoP/Q調控系統(tǒng)對APEC毒力的影響奠定了基礎。
　　為探討由PhoQ介導的PhoP對毒力基因的調控作用，本實驗從基因調控角度入手通過禽致病性大腸桿菌phoP/Q基因的原核表達獲得其蛋白產物，檢測受PhoP蛋白調控的毒力相關基因；同時，得到了PhoQ蛋白為實驗室對PhoQ的研究提供了材料。本實驗為后續(xù)進一步研究PhoP/Q二元調控系統(tǒng)對禽致病性大腸桿菌毒力的調控功能和作用機理提供一些參考。

3、　　具體內容和結果如下：
　　1.禽致病性大腸桿菌PhoP/Q蛋白的表達
　　根據(jù)NCBI中報道的APEC phoP/Q基因編碼區(qū)序列(GenBank登錄號CP000468.1)，分別設計phoP(5′、3′端分別添加EcoR I和Xho I酶切位點)和phoQ引物(5′、3′端分別添加EcoR I和Hind III酶切位點，本文中所提PhoQ均為膜外區(qū))用于擴增phoP/Q基因片段，將得到的phoP/Q基因片段克隆到PMD

4、19-T載體上，經(jīng)酶切和測序驗證后分別將PMD19-T-phoP/Q和pET32a進行雙酶切連接，成功構建pET32a-phoP/Q原核表達載體并轉化大腸桿菌BL21(DE3)。將測序正確的E.coli BL21(DE3)-pET32a-phoP/Q接種于LB液體培養(yǎng)基，IPTG誘導表達PhoP/Q重組蛋白，SDS-PAGE檢測分子量分別為42.9 KDa和34.43 KDa，與其理論分子量相一致。
　　2.禽致病性大腸桿菌Pho

5、P/Q蛋白的純化及鑒定
　　工程菌經(jīng)誘導表達，進一步證實重組的PhoP蛋白屬于胞內可溶性表達，后期選擇30℃經(jīng)0.5 mmol/L IPTG誘導過夜后離心取菌體沉淀，冰浴超聲破碎取上清過Ni-NTA親和層析柱純化PhoP蛋白，將純化的目的蛋白進行SDS-PAGE和1D-LC-MS質譜分析，結果顯示成功表達PhoP重組蛋白。
　　PhoQ蛋白是一個經(jīng)過兩次跨膜的膜蛋白，前期全序列難以表達，后期選擇表達PhoQ蛋白的膜外功能區(qū)。

6、借鑒PhoP蛋白的表達純化方法，PhoQ條件摸索后確定為37℃0.5 mmol/L IPTG誘導過夜后取LB上清進行純化，純化后經(jīng)過SDS-PAGE驗證最終得到PhoQ蛋白的胞外功能區(qū)，為實驗室后續(xù)實驗做準備。3禽致病性大腸桿菌PhoP蛋白與毒力基因的相關性分析
　　在Genbank上查找目的基因啟動子區(qū)序列，通過生物信息學分析對PhoP蛋白與DNA的結合基序(啟動子區(qū))進行預測，利用凝膠遷移實驗(EMSA)驗證PhoP蛋白能夠結

7、合的基因啟動子，最終檢測出可能受PhoP調控的宿主菌外膜蛋白、內毒素等毒力相關基因分別為iss血清毒力基因、mgtA鎂離子轉運相關基因、chuA外膜血紅蛋白受體基因、uspA應激反應基因、slyB外膜脂蛋白基因、hlyF溶血基因。
　　本實驗成功構建了pET32a-phoP/Q表達載體，分別獲得胞內可溶性PhoP蛋白和分泌型表達PhoQ蛋白的工程菌，并利用凝膠遷移實驗驗證了表達的PhoP重組蛋白具有選擇結合基因啟動子的活性，建立了