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
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文檔簡介
1、目的:赭曲霉毒素A(Ochratoxin A,OA)是自然界中的一種真菌毒素,主要由赭曲霉和青霉菌屬的某些菌株產生,廣泛存在于谷物和食品中,是一種具有致畸性、致突變性和致癌性的真菌毒素。目前己有研究表明,OA具有腎臟毒性、肝臟毒性和免疫毒性,尤其是其腎臟毒性比較明顯,主要表現為腎小管變形退化、進行性腎纖維化和腎功能的損害,被認為是巴爾干腎病和慢性間質性腎炎的主要病因之一。 c-Jun氨基末端激酶(c-Jun NH2-termin
2、al kinase,JNK)信號轉導通路是促分裂原活化蛋白激酶(MAPK)信號轉導通路之一,大量實驗提示JNK信號轉導通路可被細胞因子、生長因子、應激等多種因素激活,在細胞分化、細胞凋亡、應激反應以及多種人類疾病的發(fā)生與發(fā)展中起著至關重要的作用。目前,有關OA腎毒性機理的研究多集中在OA和DNA形成DNA加合物導致DNA的損傷、斷裂以及OA抑制線粒體的氧化呼吸鏈方面,而有關JNK信號轉導通路在OA誘導人腎小管上皮細胞(HKC)凋亡中作用
3、的研究未見報道。 鑒于此,本實驗采用細胞培養(yǎng)、MTT比色法、流式細胞定量檢測技術、免疫細胞化學、蛋白印跡等方法探討JNK信號轉導通路在OA誘導的人腎小管上皮細胞凋亡中的作用,揭示OA的腎毒性機制。 方法 1 細胞培養(yǎng)與處理HKC細胞培養(yǎng)于含10%胎牛血清、10<'5>U/L青霉素、100mg/L鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基中,37℃、5%CO<,2>培養(yǎng),細胞貼壁生長。 選擇對數生長期的細胞(傳代后24h)隨機
4、分為空白對照組、溶劑對照組、OA處理組。OA處理組加入乙醇溶解液,終濃度為1μM和5μM,空白對照組加入生理鹽水,溶劑對照組加入乙醇(1:500)。常規(guī)消化、離心收集細胞,檢測各項指標。 2 噻唑藍(MTT)比色法2.1 MTT比色法用于檢測OA對細胞生長的影響。選擇對數生長期的細胞(傳代后24h)隨機分為四組:空白對照組、溶劑對照組、1μM和5μM OA處理組,每組6孔。在OA處理組中,分別給予上述細胞4h、8h、16h、24
5、h、48h的處理時間。根據MTT檢測結果,觀察OA處理對人腎小管上皮細胞HKC生長的影響,并依此篩選出最佳的處理時間,作為本實驗的處理時間。 2.2 選擇對數生長期的細胞隨機分為四組:空白對照組、溶劑對照組、1μMOA處理組和JNK阻斷劑組(JNK特異性阻斷劑-SP600125 0.5μM+OAlμM),每組6孔。JNK阻斷劑組給予SP600125預處理30min后,再加入1μM OA處理細胞24h,觀察SP600125對OA作
6、用后HKC細胞存活率的影響。 3 流式細胞定量檢測技術(FCM)給予不同濃度OA處理后,FCM檢測人腎小管上皮細胞HKC細胞凋亡率。 4 免疫細胞化學(SP法)細胞爬片后,檢測OA處理后人腎小管上皮細胞HKC中凋亡相關蛋白caspase-3的表達以及JNK、p-JNK的表達情況。 5 蛋白免疫印跡(Western Blotting)提取細胞總蛋白,用蛋白印跡方法,檢測OA處理后人腎小管上皮細胞HKC中凋亡相關蛋白
7、caspase-3的表達情況及JNK、p-JNK的表達情況。 結果 1 OA對體外培養(yǎng)HKC細胞生長的影響MTT檢測結果表明,OA對HKC細胞的生長有一定抑制作用:給予1μM、5μMOA分別處理4h、8h、16h、24h、48h后,各時間點HKC細胞存活率均較對照組(100%)降低,尤其以24h OA處理組細胞的存活率降低更明顯(P<0.05),1μM、5μNOA處理24h細胞存活率分別為51.09%,53.38%。根據
8、MTT檢測結果,選擇24h作為本研究的處理時間。 2 OA對體外培養(yǎng)HKC細胞凋亡的影響2.1 FCM檢測細胞凋亡率FCM DNA定量檢測結果顯示,HKC細胞經OA處理24h后,1μM、5μMOA處理組細胞凋亡率分別為3.85±0.29%和4.86±0.51%,均高于對照組(1.23±0.05%)(P<0.05)。 2.2 凋亡相關蛋白-Caspase-3的表達2.2.1 免疫細胞化學染色檢測Caspase-3蛋白表達C
9、aspase-3蛋白陽性染色為棕黃色顆粒,定位于HKC細胞胞漿內。免疫細胞化學染色可見,1μM和5μM OA處理組Caspase-3陽性細胞表達率分別為54.03±9.21%、60.75±9.95%,較對照組(14.31±4.24%)顯著增加(P<0.05)。 2.2.2 蛋白免疫印跡檢測Caspase-3蛋白表達Caspase-3蛋白分子量為32kD,經SDS-PAGE電泳、轉膜后,空白對照組、溶劑對照組、OA處理組均在32kD位置出
10、現了棕色的陽性條帶。以β-aetin(42KD)作為內參照,采用圖像分析系統(tǒng)對雜交條帶進行定量分析,結果表明,OA處理可以誘導體外培養(yǎng)HKC細胞Caspase-3蛋白表達。 3 OA對體外培養(yǎng)HKC細胞磷酸化JNK(p-JNK)表達的影響。3.1 免疫細胞化學染色檢測p-JNK的表達p-JNK定位于HKC細胞胞漿和胞核內。免疫細胞化學染色可見,1μM、5μM OA處理組p-JNK陽性細胞表達率分別為53.31±11.01%和58
11、.53±11.11%,明顯高于對照組(10.19±6.85%)(P<0.05) 3.2 蛋白免疫印跡檢測p-JNK的表達p-JNK是JNK的活化形式,由p-JNK1、p-JNK2、p-JNK3組成。p-JNK1蛋白分子量為54kD;p-JNK2、p-JNK3蛋白分子量為46kD,經SDS-PAGE電泳、轉膜后,HKC細胞空白對照組、溶劑對照組、OA處理組均在54kD、46kD位置出現了兩條棕色的陽性條帶。經圖像分析系統(tǒng)對雜交條帶
12、進行定量分析,結果表明,OA處理可以使HKC細胞p-JNK表達增高。 4 OA對體外培養(yǎng)HKC細胞JNK表達的影響。4.1 免疫細胞化學染色檢測JNK的表達JNK定位于HKC細胞胞漿內。免疫細胞化學染色可見,與對照組相比,1μM和5μM OA處理組JNK陽性細胞表達率無明顯變化(P>0.05)。 4.2 蛋白免疫印跡檢測JNK的表達JNK由JNK1、JNK2、JNK3組成,JNK1蛋白分子量為54kD,JNK2、JNK3蛋白分子
13、量為46kD。經SDS-PAGE電泳、轉膜后,HKC細胞對照組、OA處理組均在54kD、46kD位置出現了棕色的陽性條帶。經圖像分析系統(tǒng)對雜交條帶進行定量分析,進一步證實給予OA處理后,體外培養(yǎng)的HKC細胞JNK的表達無明顯變化。 5 JNK特異性阻斷劑-SP600125對OA處理后HKC細胞存活率的影響MTT檢測結果發(fā)現,JNK阻斷劑組(SP600125預處理+OA)HKC細胞的存活率(82.09%)明顯高于OA處理組66.8
14、3%(P<0.05),但低于溶劑對照組(98.58%)(P<0.05),說明SP600125對OA致HKC細胞損傷具有部分阻斷作用,提示OA可能通過JNK信號轉導通路參與介導細胞死亡的過程。 結論 1 OA可以促進體外培養(yǎng)HKC細胞Caspase-3蛋白的表達,誘導細胞凋亡。 2 OA可以促進體外培養(yǎng)HKC細胞p-JNK的表達,提示JNK信號轉導通路可能參與OA誘導的HKC細胞凋亡。 3 SP600125
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